金线莲种植

金线莲种植

2.金线莲的种植基质：使用泥炭土来种植。有些品质好的泥炭土，很松很透气，一点儿也不会粘，是一种有机土壤。泥炭土4份+2号蛭石4份+椰糠2份最理想。

3. 金线莲对于光照的要求：3000-5000勒克斯。夏天的中午，阳光直接照射的光照强度，大约是10万勒克斯，使用2层的80%的遮阳网，10万×20%×20%=4000勒克斯，光照强度差不多。室内的光照强度只有100勒克斯，所以不能室内种植，否则会出现徒长（杆细细长长的）；光照过强则生长不好，并可能晒死。家里种植，应该放在可以晒到早上或者傍晚30-60分钟的阳光的地方，并且其他的时间比较亮的地方（比如靠近窗户的地方）。

4.金线莲对于温度的要求：0度以下冻死，15度以下生长缓慢，25-30度是最适合温度，超过30度生长缓慢，长期高于35度，苗易受伤。

5.金线莲的浇水：泥炭土表面不能变干。

6. 金线莲的施肥：如果采用的是较好的泥炭土，实际上是一种有机土壤，可以少施肥。施肥，推荐使用花多多1号水溶性肥料，氮磷钾平衡，并且有微量元素，因为有微量元素，会让金线莲生长得更好，并且使得金线莲成品中含有微量元素。以不低于2000倍的浓度，多于10天施肥一次，肥料必须完全溶解后，当作叶面肥使用，最佳的施肥时间，是在晴天的傍晚，太阳下山之后。阴天、晴天的中午不宜施肥。连续阴雨天的时候，停止施肥。温度低于15度的时候，减少施肥。种植其他的植物，施肥的方法，也可以参考本

7.金线莲苗的种植：在第一片叶子以下，将尽量多的杆埋在泥炭土里。一个40厘米×40厘米的端盘，一般种49棵，土厚7-8厘米。

人工培植金线莲方式

因金线连分布于海拔500-1500公尺的阔叶林床，且生长缓慢，所以在栽培中温度、湿度，是成功与否的重要因素。

1、温度

金线连之发育、生长、开花与结果都有一定的温度。在金线连栽培环境中，温度的影响甚巨，温度过低则生长缓慢，高于30℃或低于15℃则不利于生长，若低于10℃，须加设施保温，适宜的栽培温度为20 ~ 25℃，栽培场所温度过高时，可利用遮阴、浇水、加强通风或以蒸发冷却方式如喷雾或使用水墙等方法以将温度降下来。

2、湿度

空气湿度高有住于生长并提高植株鲜重，但栽培介质不能过湿，过湿易导致茎腐病，特别在高温( 28-32℃ )、高湿下，容易有镰刀菌感染进而发生猝倒病，这是平地夏天不能栽培成功的主要原因。 茎腐病(stem rot ) 之病源菌为Fusarium oxysporum，基腐病(basal rot) 为Pythium ultimum ，目前以茎腐病发生最为严重，占病害发生之 90%( 8 ) 。

3、光度

金线连属于阴性植物，原生于森林内树下半遮阴的地方，因此适合金线连栽培的光度，约为正常日光量的1/3，最忌夏秋中午左右之直射阳光，此将引起日灼损伤叶片，一般而言，若光度高于5000lux 则会使新生叶片白化，低于 1000lux将使植株纤细徒长，一般栽培时可利用75%遮光网双层控制在4000lux 左右，如此除了具有遮阴效果外，也利于

湿度的保存及通风。海拔1000 公尺左右的地区栽培金线连，由于温度适宜，因此夏天的生产量几乎是平地的两倍，惟冬天来预防寒害的发生，保温设施中尤以隧道式阴棚较易保温，平地栽培场若亦须采用此方式栽培，应将阴棚架高一些，以利于通风。

4、栽培介质

金线连属地生兰又是药用植物，所以必须使用清洁及适宜的栽培介质栽培，适宜的介质除了须具备有良好的透气性外尚须有良好的保水性，目前所使用的介质包括有蛇目屑、碳化稻壳、蛭石、真珠石、腐叶土及水苔等，栽培中依不同的介质混合比例，来调整介质的通气性及保水性，苗株刚由瓶苗移出时最好以2号蛭石栽植，因蛭石系经高温处理，吸水及透气性均佳，且富含镁及钾离子，具蓄积养份之能力，可降低无菌状态移出的苗株遭受病菌为害的机会，并可助于瓶苗适应环境变化的机会，金线连不宜积水，浇水量及次数将会随着植株的发育状况及生长环境而须调整，介质中的肥料以缓效性的有机肥为主。泥炭土4份+2号蛭石4份+椰糠2份最理想。

5、繁殖方式

在组织培养尚未被应用在金线连上时，传统的繁殖方法为分株、扦插、种子播种，其中因为种子收获不易及播种的发芽率低，所以以往大都以分株及扦插的方式繁殖，然而因易受环境的影响，此方式的存活率约为30 ~ 70 %(9)，金线连生长缓慢，以种子播种繁殖而言，必须两年以后才能利用，现在利用茎段培养可以提早采收，而采收适期的决定仍然和栽培时间的长短有密切的关系，至少必须在出瓶栽培十个月(定植后8个月) 采收较适宜。

6、种殖基础的选址：根据金线莲生长特性，适宜选择在无工业污染环境，有天然洁净无污染水源，方便喷灌．靠山边阴面处建立生产产地。

7、金线莲种殖管理；金线莲生长速度慢，每个月仅长出１－２叶片，还要不断人工喷灌保持一定湿度，通气等条件。一般每隔一定时间浇灌一次，适量施肥和抗病农药保持金线莲的生长要求。在气候条件适宜的地区，当年种殖，当年就可采收。

种植金线莲时，通常用腐殖土作为基质。种植前，应将金线莲苗从瓶子里取出，然后用清水把苗上的培养基清洗干，再把苗上的水滴晾干。人工栽培金线莲主要是采用大棚栽培。建造大棚应根据金线莲的生长要求，选择在有林有水的山沟，以保证阴凉，有水灌溉，冬季避风保暖，减少散热，保持湿度，且交通便利；大棚的透光度在40％～50％，大棚结构以北高南低的斜面为宜，棚前柱高1.5米，后柱高1.2米，柱距2～5米；顶铺约5厘米厚的茅草，上盖一层塑料薄膜，棚内畦高30～50厘米，畦宽1.2米；也可在棚内搭棚梁，进行立体种植；人工组培苗常年均可栽植，每平方米500～1000株，栽植宜浅忌深，栽后覆盖干净干燥的苔藓，喷洒清水，棚内温度不超过25℃，并注意保湿、保温。田间管理的好坏，关系到金线莲的成活率、生长及产量，应着重做好以下工作：

炼苗移栽移栽前,把瓶盖苗揭开置于栽植棚内炼苗1～2 周,或采用三步炼苗法炼苗:将未揭盖的瓶苗置于棚内一段时间,然后松盖炼苗几天,最后揭盖再炼苗3～5 天,效果更好13 ] 。待组培苗茎由白色转为绿色时,洗净琼脂培养基,用多菌灵400 倍消毒10 min, 按苗重、大小分级后,选壮苗(株高大于3 cm, 茎转绿挺拔不披软,根2 条以上) 直接定植。苗势较弱的最好在室内用干净河沙先洗15 天左右,待其充分发根、茎生长粗壮后再移植于室外,可明显提高成活率。移栽要选择阴凉天气或凉爽的傍晚进行,夏季高温高湿条件下不宜移栽。何云芳等的研究结果表明,移栽期以9 月份最理想。

①松土除草

②施肥 栽植后的生长阶段，通常施用豆饼、猪粪、牛马粪等农家肥，并在每100千

克肥液中加少量的硫酸亚铁，以促进叶色浓绿而富有光泽；在生长季节，每隔半个月还可用0.3％尿素加0.2％磷酸二氢钾溶液喷一次，连喷4次；施肥时切忌污染金线莲叶片，不慎污染，应立即喷清水。用高效稀土1 600 倍液喷施,取得了显著的增产效果。移栽后1 个月左右开始施肥:叶面施肥每月喷1 次,喷至叶面滴水为止;有机肥可2 个月施1 次,每667 m2 施50 kg 左右。金线莲植株含水量高达80 %, 因此从移植至采收都要注意保持皇湿润浇水施肥次数还与皇有关,如河沙保水保肥力弱,应少量多次施用,而椰糠、泥炭土等则反之。

③浇水 适时浇水，提高土壤、空气湿度。

④搭盖遮阴棚，调节透光度 棚内透光度的大小与生长发育密切相关，透光以三阳七阴为宜；早春棚上盖草宜稀；4月份透光度可减少到30以下；10月以后可把大棚盖草适当除去部分；直射光照时间较长或西晒处，可采用围篱、遮阳网等减少透光度。

病虫害防治

金线莲病虫害发生大多由高温多湿、通风不良及受光照与栽培地不清洁,应设法克服这些不良因素和防除杂草。金线莲在炎热季节易发生茎枯病,春末夏初易发生立枯病、猝倒病,因此在病害高发季节, 可用农用硫酸链霉素1 000 万单位或代森锰锌200 倍、多菌灵1 000 倍等轮换喷施,每15 天喷1 次 。虫害主要是蛞蝓和蜗牛,5～6 月尤为严重,可用蜗牛药洒于苗床及四周防治[ 16 ] 。金线莲栽植后,在管理好的条件下生长5～6 月, 株高即可达到10 cm 以上,叶片5～6 片,鲜重1g 左右,收获时可视苗情重发。

金线莲栽植后生长4～5个月，株高10厘米以上，5～6片叶，鲜重1～2克即可收获。收获时连根拔起（也可割茎留根再生），抖去泥土，置于阳光下曝晒或用火烘干即成干品。

人工栽培的金线莲一般亩产鲜草250～350千克，鲜草每千克售价150元左右，金线莲是一种值得发展的经济植物。

金线莲别名金线兰、金丝草，为兰科开唇植物花叶兰属多年生珍稀中草药。它在民间使用范围较广，素有“药王”、“金草”、“神药”、“乌人参”等美称。经有关部门测定，金丝莲中氨基酸组成、成分、含量及抗衰老活性微量元素的含量均高于国产和野生西洋参。目前，我国对金线莲的药用研究仅涉及文献考证、栽培、组培及商品调查等。

金线莲全草均可入药，其味平、甘，有清热凉血、祛风利湿、解毒、止痛、镇咳等功效，主治咯血、支气管炎、肾炎、膀胱炎、糖尿病、血尿、风湿性关节炎肿瘤等疑难病症。强心甙、留醇、多糖等。几百年来长作为民间用药，在民间传说具有治疗白病之功效，素有“药王”美称。医学专家，将金线莲用于治疗乳癌（MCF-7）起到很好的效果<<福建药物志>>记载其性平，甘，具有清热，凉血，怯风湿。外用可治肿伤、创伤及毒蛇咬伤。明显的安定、镇痛及抗炎作用,进一步验证了金线莲的临床疗效。

现代分析研究表明金线莲是一种滋补强壮药,含有种类齐全的维生素和较高的多糖,其微量元素含量、氨基酸含量以及8 种人体必需氨基酸含量均高于国产西洋参和野生参 。日本山田博士报道发现了金线莲的抗菌体,具有抗菌和抗癌的神奇功效,尤其是对肺部细胞的效果更为显著。我国的研究者也发现金线莲具有强心甙成分[3] 以及起镇痛作用的生物碱[4] ,为金线莲强心和止痛功效提供了依据;陈卓等证实了金线莲的降血糖作用[5] ,表明金线莲的降血糖成分主要存在于水提物中[6] ; 动物实验还表明,野生、栽培、组培。

金线莲属植物有30多种，一般分布在海拔300～1200米的丘陵地，我国福建、广东、广西、海南、四川、贵州、云南均有野生金线莲。它性喜阴凉、潮湿，尤其喜欢生长在有常绿阔叶树木的沟边、石壁、土质松散的潮湿地带，要求温度18℃～20℃，光照约为正常

日照的1/3，最忌阳光直射。其株高8～20厘米，根茎细软，茎圆筒形，先端直立，基部成匍匐状，茎节明显；叶互生具柄，呈椭圆形，叶面有光泽、墨绿色中有金黄脉网，叶背淡紫红色；花为完全花，总状花序具有1～6朵松散的花，花序梗长8～13厘米，被柔毛，花苞片淡紫色，卵状披针形。金线莲除药用外，还是一种极具观赏价值的室内观叶珍品。金线莲鲜品是很容易识别的，金线莲是草本植物,高一般在6--8CM，根茎较细，节明显，有几片长约4CM的叶子,比较有特点的是墨绿色叶页面上有金黄色网状脉，在阳光下会闪闪发光，故称金线莲.背面紫红色，主脉3~7条总状花序顶生，花序轴被柔毛，萼片淡紫色。 气微，味淡。

一、金线莲概况

1、金线莲成份：金线莲是兰科开唇兰属，学名；花叶开唇兰。金线莲全草成份：

主治：支气管炎、肾炎、膀胱炎、糖尿病、血尿、风湿性关节炎、急慢性肝病、降高血压、小儿急惊风等疑难杂症。

2、人工繁殖方式：采用人工搭建遮阴栅，取到夏天高温防护，一般在遮阴栅内夏天温度可以，保持在３４c以下这个温度是适合金线莲生长的，生产上培植金线莲采用无性繁殖方法，其增值速度和扩蘩量一般为３－５倍，生长周期１１个月可采收鲜草（金线莲）。初次培植，种苗采用各地收购来鲜草金线莲做为种苗培植，第二年再次培植可自供种苗。在遮阴栅内可采用多层式（３－５层）培植，提高土地利用面积。

四、投资金线莲培植效益，分析预算

1、简易式：采用简易式木制结构，１亩地。层式可利用培植面积１０００平方米，亩

产量可达６００＼市斤鲜草金线莲。第一年所需成本７万元，产值１０万元，当年可回收成本并营利成本的３０％。第二年成本３万元，产值１０万元，获利７－８万元，今后每年和第二年一样。随着规模不断的扩大效益同样成倍增长。

2、永久性：采用永久性铁架式，成本更高，但使用时间长。第一年约高出简易木制结构成本２－３倍，第二年获利成本和简易木制结构相同。

金线莲组培快繁技术研究

【摘要】 目的建立金线莲快繁体系。方法以茎段为外植体，开展了茎段不同部位、培养基、激素、有机物和活性炭对不定芽增殖、幼苗生长的影响研究，并进行了移栽试验。结果外植体以不含顶芽和长根的中间段茎节为好；不定芽增殖最佳培养基配方为MS（或B5）+BA3.0 mg/L +NAA0.5～1.0 mg/L，两个月增殖倍数达5.0以上；壮苗最适培养基为1/2MS＋NAA3.0 mg/L＋6-BA 0.5 mg/L＋香蕉提取物20%（或椰子汁20%）；试管苗移栽适宜的基质为菜园土1份＋2～3 mm粗砂2份（或1份）＋木屑1份（或2份），3个月成活率均达100%，且生长良好。结论采用上述方法，能实现金线莲幼苗的快速繁殖。加快人工栽培，以保护金线莲野生资源、稳定市场供应。现将有关实验结果如下。

1 材料与方法

1.1 材料 无菌繁殖体系的建立为浙江金线莲野生种源，其它实验为继代培养的不定芽及无根幼苗茎段。

1.2 无菌繁殖体系的建立 取生长健壮、无病虫害的植株，去叶后放入低浓度的洗

衣粉水中漂洗3～5 min，然后用流水冲洗30 min。在超静工作台前，用75% 酒精湿润5～6 s，放入0.1%的HgCl溶液灭菌12～13 min，用无菌水冲洗5～6次。将消毒好的茎按上段（具茎尖）、中段和下段（匍匐茎段）切成长约1.5～2 cm，带有1～2个节间的小段，分别接种于MS+6－BA 4.0 mg/L +NAA 0.4 mg/L 培养基上，pH5.6，蔗糖2.5%，琼脂0.7%。培养条件为：温度(25±2）℃ ，光照时间12 h/d，光照强度1 500～2 000 lx。

1.3 不定芽诱导

1.3.1 基本培养基对不定芽诱导的影响 采用单因素实验，培养基选用MS（Murashige-Skoog）［3］，1/2MS（大量元素减半，其他成分不变），VW(Vacin & Went)，B5（Gamborg·Miller & Ojima）和KC(Knudson C)等5种，分别添加6－BA 4.0mg/L，NAA 1.0 mg/L。

1.3.2 激素对不定芽诱导的影响 以MS为基本培养基，添加不同种类及浓度的细胞素和生长素。

上述实验选取无菌健壮植株，切取长约1～1.5 cm，带有一个节间的茎中段，每处理接10个茎节，重复3次。培养期间定时观察不定芽生长情况，培养60 d后统计不定芽数。其它条件同实验“1.2”项。

1.4 壮苗培养

1.4.1 激素对幼苗生长和发根的影响 以1/2MS为基本培养基，NAA设1～5 mg/L 5个处理，6－BA设0.5，1.0和1.5 mg/L 3个处理，共15个处理。

1.4.2 添加物对幼苗生长和发根的影响以1/2MS＋NAA 2.0 mg/L＋6－BA 0.5 mg/L为基本培养，考察马铃薯提取物、香蕉提取物、苹果提取物、椰子汁等4种天然有机物和活性炭对金线莲幼苗生长的影响。

上述每种培养基均接入经增殖培养高约3 cm，具3～4节间、有1～2片的无根幼苗，每处理接种接无根幼苗10株，重复3次。培养后每隔15 d观察生长情况1次，至3个月考察每株净增加的叶片数、重量及发根数，并进行数理统计分析。

1.5 移栽 选苗高约6～8 cm，茎基直径约2 mm，丛生根有2～3条的试管苗，炼苗4 d后，洗净附着在植株上的培养基，并晾干洗涤水后移入直径为15 cm，装有不同基质的土盆中，考察不同基质对金线莲试管苗成活率的影响。移栽前，实验基质均用45%多菌灵可湿性粉剂800倍溶液浇透消毒。实验条件为遮荫度80%的荫棚，保持空气相对湿度的80%～90%。如发现有病死植株，及时拔除。每处理5盆，每盆种5株，重复3次，移栽3个月后考察成活株数，并进行数理统计分析。

2 结果

2.1 无菌繁殖体系的建立 实验表明，外植体茎段的分化程度对诱导结果存在一定的影响。从表1可知，上、中段茎均能萌动生长。上段茎因有顶芽的存在，顶端优势表现较为强烈，因而以生长为主，不定芽发生较少，平均芽增殖数为0.6个；中段茎不定芽发生快、量大、长势好，平均芽增殖数为4.05个，并形成多枝丛生状。下段茎由于组织相对老化，虽有不定芽发生，但发生量与生长势均较弱。这和陈自力［4］报道的结果一致。

从实验中观察到，不定芽的产生以侧芽萌生为主。一般在培养15～20 d后，茎节上潜伏的叶腋芽萌动膨大，芽丛在节的四周萌出，起初为白色略带黄色，随着培养时间加长，

芽不断伸展，逐渐转为黄绿色，形成主芽。叶腋芽是单生的，极个别节上能对生两个腋芽，未发现茎部或切口出不定芽。培养30 d左右，主芽基部的节再生侧芽(称一级侧芽)，45 d左右一级侧芽节上又可发生二级侧芽，随着芽的生长、出现叶片，节处毛并产生根，外被浓密的白色绒毛，从而形成完整小植株。培养3个月后每天观察，侧芽分生组织的增殖，一般只出现主芽和一二级侧芽或苗；培养5个月以上，主芽、侧芽较高，叶片较多、大，只有少数出现三级侧芽或苗。这种腋芽萌生的增殖形成了主轴分枝型的芽苗，随培养时间或继代繁殖代数的增加，或激素的作用，芽或苗因节间短，多数为形成似不定芽或丛生苗。培养过程中，未见愈伤组织，也没有发现有原球茎和类原球茎产生。

表1 金线莲茎段外植体不定芽诱导

2.2 不定芽诱导

2.2.1 基本培养基对不定芽诱导的影响 以金线莲的茎节段作为外植体，腋芽能快速萌发出不定芽体。经60 d的培养，增殖倍数可达3.1～5.4倍。但基本培养基对不定芽的诱导具有明显的影响，MS，B5培养基不定芽增殖率分别为5.4倍与5.2倍，比其它培养基增加23.8%～74.2%。

表2 基本培养基对金线莲不定芽诱导的影响（略）

经LSR差异显著性测定，MS，B5培养基之间无明显差异，与1/2MS，KC和VW之间存在极显著差异，且MS，B5培养基上诱导产生的不定芽色绿、粗壮（见表2），表明MS，B5培养基适合作为金线莲茎段不定芽诱导的基本培养基［5］。

2.2.2 激素对不定芽诱导的影响 激素种类、水平与配比对组织培养快速繁殖在效率存

在明显的影响，6-BA、KT和NAA是3种常用生长调节剂，其添加量对金线莲不定芽增殖的影响很大。结果见表3。从表3可知，同为细胞素的6-BA，KT在相同的添加量下对不定芽的增殖效果差异极显著，6-BA比KT的增殖率提高46.0%和55.0%，表明6-BA比KT更适合金线莲茎节不定芽的诱导。

6-BA的浓度也影响不定芽诱导效果。在添加量小于4.0 mg/L的情况下，随浓度的提高，不定芽增殖率明显上升，添加量为4.0 mg/L的不定芽增殖率比2.0，1.0 mg/L分别提高22.1%和47.6%。当6-BA添加量达到6.0 mg/L时，其增殖率还出现下降趋势，表明本实验条件下6-BA添加的适宜量为4.0 mg/L。

表3 激素对金线莲不定芽诱导的影响（略）

生长素NAA对金线莲不定芽的诱导与生长具有明显的促进作用。从表3可以看出，添加了NAA的培养基不定芽增殖量与生长明显较不添加的好，芽体粗壮、色浓绿，其中添加0.5 mg/L的表现最好，添加1.0 mg/L的其次，但二者间差异未达到显著水平；与其它不添加NAA的相比差异达极显著水平。表明在本试验条件下NAA适宜添加的量为0.5～1.0 mg/L。

2.3 壮苗培养

2.3.1 激素对幼苗生长的影响 在金线莲壮苗培养中，NAA较6-BA对促进幼苗生长的影响更为明显。结果见表4。NAA浓度低于3 mg/L时，对幼苗生长有促进作用，随浓度的增加，叶片净增量、发根数和鲜重净增量明显增加，当浓度达到4.0 mg/L时，叶片净增量、发根数和鲜重净增量增加不明显。6-BA在0.5 mg/L情况下，比不加的具有一定的促进作用，但未达显著水平；在浓度为1.0 mg/L，1.5 mg/L情况下，叶片净增量、发根

数和鲜重净增量反而减少，但在幼苗基部观察到丛生状不定芽的产生，表明6-BA在浓度高于1.0 mg/L情况下，有利于金线莲不定芽的生成，对幼苗生长不利。

从表4也可以看出，处理9、10号在发根数、鲜生净增量方面较其它处理明显提高，达极显著差异；在叶片净增量方面，除与处理13、14号无明显差异外，与其它处理之间的差异达极显著水平，表明在金线莲壮苗培养中，NAA适宜添加的量为3.0～4.0 mg/L，6-BA 添加量为0.5 mg/L或不加。

表4 激素对金线莲幼苗生长的影响（略）

2.3.2 活性炭与有机添加物对幼苗生长的影响 结果见表5。从表5可知，不同的添加物对金线莲幼苗生长的影响表现不一，香蕉、椰子汁对促进幼苗生长最为有利，叶片净增量、发根数和鲜重净增量均高于其它处理，二者间无明显差异；马铃薯对幼苗生长不利，与其它处理相比均存在极显著差异水平。活性炭对金线莲幼苗生长具有一定的促进作用，在添加0.3%情况下，叶片净增量、发根数和鲜重净增量与对照相比均显著提高，差异达极显著水平；但与香蕉、椰子汁处理相比，其促进幼苗生长的作用不如前二者，除发根数无差异外，叶净增量与香蕉、椰子汁处理差异达显著水平，鲜重净增量差异达极显著水平。同时观察到活性炭、香蕉和椰子汁新发根洁白、粗壮。试验结果表明添加20%香蕉和椰子汁最适宜金线莲幼苗的生长。

表5 添加物对金线莲幼苗生长的影响（略）

2.4 移栽 金线莲试管苗移栽3个月后的植株成活情况见表6。从表6中可以看出，处理7和处理9保持100%的成活率，处理3和处理8的植株成活率也在93%以上，处理1的成活率最低，仅为56%。经LSR差异显著性测定，处理3、7、8、9号之间无明显差异，

与处理5、6号差异达显著水平、与处理1、2、4号差异达极显著水平。表明在菜园土中加入粗砂、木屑能明显提高金线莲试管苗移栽的成活率，适宜添加的比例为1份菜园土中加入粗砂2份、木屑1份或粗砂1份、木屑2份，要求充分混匀。

表6 种植基质对金线莲试管苗移栽成活率的影响（略）

3 小结

金线莲不同部位的茎间对不定芽的诱导结果存在明显的差异，以不含顶芽和长根的中间段茎节为好，不定芽增殖率达4倍以上。

采用金线莲中间茎节作外植体诱导不定芽萌发时，适宜的培养基为MS或B5＋6-BA 4.0 mg/L＋NAA 0.5 mg/L～1.0 mg/L，蔗糖浓度为2.5%。

适宜的壮苗培养基为1/2MS＋NAA 3.0 mg/L＋6-BA 0.5 mg/L＋香蕉提取物20%（或椰子汁20%），蔗糖浓度为3.0%。3.4 试管苗在充分混匀的1份菜园土＋2份粗砂（2～3 mm）＋1份木屑，或1份菜园土＋粗砂1份＋木屑2份的基质中生长良好，3个月后成活率达100%。

MS+6培养基成分含大量元素（碳源，氮源，水，无机物，生长因子）又分析为

钾 KNO3

铵 NH4NO3

磷酸二氢钾 KH2PO4

硫酸镁 MgSO4.7H2O

氯化钙 CaCl2.2H2O

微量元素

碘化钾 KI

硼酸 H3BO3

硫酸锌 ZnSO4.7 H2O

钼酸钠 Na2MoO4.2 H2O

硫酸铜 CuSO4.5 H2O

氯化钴 CoCl2.62

铁盐

乙二胺四乙酸二钠 Na2.EDTA

硫酸亚铁 FeSO24.7H2O

有机成分

肌醇

甘氨酸

盐酸硫胺素 VB1

盐酸吡哆醇 VB6

烟酸 VB5或VPP

蔗糖 sucrose

琼脂 agar

植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。狭义是指组培指用植物各部分组织，如形成层.薄壁组织.叶肉组织.胚乳等进行培养获得再生植株，也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织的培养，愈伤组织再经过再分化形成再生植物。

我公司对构树的组织培养过程如下： 1、初代培养：

在无菌的条件下，把构树顶芽切成1㎝左右的茎段，切取腋芽茎段与顶芽同长，含一个芽，芽上茎节部分短一些，芽下茎节部分长一些，将原切口重新切出新切口。每一瓶培养基接种一个芽，进行初代培养。

2、继代培养：

选择经初代培养成功的含有多个芽的芽丛切割成单芽，并将芽丛中高达2㎝以上的单芽切割成含有一个腋芽的茎段，接种在继代培养基上。可以将继代苗反复继代培养，这样可以快速获得相同形状相同遗传特性的苗。

3、生根培养：

当继代培养的芽苗长到1.5～2㎝时，将芽苗转移到生根培养基上。

接种 继代培养

PH试纸

生根培养基