ActaBot.Boreal.GOccident.Sin.
:/:// doi10.7606.issn.1000G4025.2019.09.1642 httxbzwxb.allournal.netjpj
土壤压实胁迫下丛枝菌根真菌对
高羊茅生理生态的影响
()青岛农业大学园林与林学院,山东青岛266109
徐 萌,徐 孟,李 峰∗
(、,摘 要:该试验设计4种土壤压实处理[土壤容重分别为1.并与压实处理前分2CK1.3、1.4和1.5gcm-3]1),———摩西斗管囊霉(别接种2种丛枝菌根真菌(和arbuscularmcorrhizalfuniAMF)Funneliormismosseae,Fm)ygf个处理,分析不同处理对高羊茅(品种‘艾瑞3号’的生理生态指标的影响,为AMF在压实土壤中的Festucaelata))、],根内根孢囊霉(组成的4个接种处理[共组成1Rhizohausintraradices,RiFm、RiFm+Ri和不接种(CK62)pg()应用提供理论基础.结果表明:高羊茅根系的菌根侵染率和菌丝密度均随土壤容重的增加而逐渐降低;与C1K1
菌丝密度分别显著降低4且在1.接种F39.8%和30.0%,3.8%、42.1%和43.8%,5gcm-3土壤容重下,m+Ri)接种AMF能有效增加土壤压实胁迫下高羊茅植株的株高、分蘖数和干物质质量,显著提高高羊茅耐36.3%.(2)接种AMF能显著提高土壤压实胁迫下高羊茅根系活力以及过氧化氢酶(活36.1%、39.5%和144.0%.(3CAT)受力,接种F分蘖数及干物质质量在1.显著增加m+Ri处理的株高、5gcm-3土壤容重下分别比未接种(CK2)处理的菌根侵染率和菌丝密度比单接种F比单接种Rm分别提高17.3%和25.2%,i处理分别提高53.0%和
c、相比,在土壤容重1.5gm-3处理下接种Fm、RiFm+Ri的高羊茅根系菌根侵染率分别显著降低了27.8%、
)的上升幅度分别提高4接种AMF能显著提高土壤压cm-3土壤容重下比对照(CK3.1%、100.0%和59.3%.(52)c的升降幅度分别为5Fm+Ri处理在1.5gm-3土壤容重下比对照(CK2.5%、33.3%、181.1%和-32.9%.综2)上所述,土壤压实胁迫显著抑制AMF的侵染,而共同接种F且共同接种处m+Ri能显著促进AMF对根系的侵染,理的效果明显优于单一接种;降低氧化胁迫造成的伤害、提高植物叶绿素含量AMF可通过增强高羊茅根系活力、与光合作用来增强自身的抗土壤压实能力.中图分类号:Q945.79
文献标志码:A
关键词:丛枝菌根真菌;土壤压实;光合参数;叶绿素;过氧化氢酶
、,,实胁迫下高羊茅叶片净光合速率(蒸腾速率(以及气孔导度(显著降低其叶片胞间C接种Pn)Tr)GOCs)2浓度(i)
()、接种AMF能显著提高土壤压实胁迫下高羊茅叶绿素a接种F4b以及总叶绿素含量,m+Ri处理在1.5g
性,接种F的1.m+Ri处理的根系活力以及CAT活性在1.5gcm-3土壤容重下分别是对照(CK4和1.5倍.2)
EffectofArbuscularMcorrhizalFunionPhsiolondEcoloygygyagy
ofFestucaelataunderSoilComactionStressp
(,Q,Q,)ColleeofLandscaeArchitectureandForestrindaoAriculturalUniversitindaoShandon66109,Chinagpyggyggg2
∗
,,XUMenXUMenLIFenggg
:AbstractTheexerimentdesinedfourkindsofsoilcomactiontreatment[soilbulkdensitf1.2pgpyo
(,,,,CK1.3,1.4,1.5gcm-3]andfourinoculationtreatments[Fm,RiFm+RiandnonGinoculation1)(]wCKithinoculatinwokindsofarbuscularmcorrhizalfuni(includinunneliormismosseae,FmgtyggF2)f收稿日期:修改稿收到日期:2019G06G02;2019G09G02
)基金项目:青岛市科技计划基础研究项目(121454
,:作者简介:徐 萌(女,实验师,主要从事菌根生理生态研究.E1980-)Gmailbaiuo69@163.comg
:李 峰,讲师,硕士,主要从事园林植物栽植养护.E∗通信作者:Gmail853404450@q.comq
等:土壤压实胁迫下丛枝菌根真菌对高羊茅生理生态的影响9期 徐 萌,1643
),andRhizohausintraradices,Ribeforecomactiontreatmentandatotalof16treatments.WeanaGppglzedtheeffectsofdifferenttreatmentsonthephsioloicalandecoloicalindexesofFestucaelatavarietyyggy‘,AiRui3’andprovidedatheoreticalbasisforthealicationofAMFincomactedsoil.Theresultsppp
:(showedthat1)themcorrhizalinfectionrateandmcelialdensitftherootsoftallfescuedecreasedyyyo
radualliththeincreaseofsoilbulkdensit.ComaredwithCKtheinfectionrateofrootsofhihgywypg1,
-3
fescuerootsinoculatedwithFm,RiandFm+Riundertreatmentwithsoilbulkdensitf1.5gcmyowassinificantlreducedb7.8%,39.8%and30.0%,resectivel.ThemcelialdensitecreasedsiGgyy2pyyydg
,,nificantl3.8%,42.1%and43.8%,resectivel.Moreoverunder1.5gcm-3soilbulkdensityby4pyy
themcorrhizalinfectionrateandmcelialdensitfFm+Ritreatmentincreasedb7.3%and25.2%,yyyoy1
,,)resectivelwhichwas53.0%and36.3%hiherthanthatofsinleinoculationresectivel.(2InocuGpyggpy
,lationwithAMFcaneffectivelincreasetheplantheihttillernumberanddratterqualitftallfesGygymyo
,acueplantsundersoilcomactionstressndsinificantlmrovethetoleranceoftallfescue.Plantpgyip
,heihttillernumberanddratterqualitfFm+Ritreatmentweresinificantlincreasedb6.1%,gymyogyy3
,()39.5%and144.0%,resectivelunder1.5gcm-3soilbulkdensitomaredwithCK3InoculaGpyycp2.
tionwithAMFsinificantlincreasedtherootactivitndcatalase(CAT)activitftallfescueundersoilgyyayo
comactionstress.TherootviorandCATactivitfFm+Riinoculatedwith1.4gcm-3soilbulkdenGpgyo
sitere1.4timesand1.5timesthanthatofCKresectivel.(4)InoculationwithAMFcansinifiGywpyg2,
,cantlincreasethecontentsofchlorohllabandtotalchlorohllintallfescueundersoilcomactionypypyp
-3
stress.InoculationwithFm+Ritreatmentinthesoilbulkdensitf1.5gcmwas43.1%,100.0%yo
()and59.3%hiherthanthatoftheCK5InoculationwithAMFsinificantlincreasedthenetphotoGggy2.
,sntheticrate(Pn)transirationrate(Tr)andstomatalconductance(Gs)oftallfescueundersoilcomGyp,actionstressandsinificantlecreasedtheintercellularCOoncentration(Cofleaves.Inoculationpgyd2ci)
withFm+Ritreatmentwas52.5%,33.3%,181.1%and-32.9%hiherthanthatoftheCKndertheg2u
,soilbulkdensitf1.5gcm-3.Insummarsoilcomactionstresssinificantlnhibitedtheinfectionyoypgyi
,ofAMF,andcoGinoculationsinificantlromotedtheinfectionofAMFonrootsandtheeffectofcoGinGgyp
oculationwithFm+Riwassinificantletterthansinleinoculation.AMFcanenhanceitsownresistGgybg
,ancetosoilcomactionbnhancintheactivitftallfescuerootsreducinthedamaecausedbxidaGpyegyoggyo
,tivestressincreasinlantchlorohllcontentandphotosnthesis.gppyy:;;;;Keordsarbuscularmcorrhizalfunisoilcomactionhotosntheticparameterschlorohllcatalaseygppypyyw, 丛枝菌根真菌(arbuscularmcorrhizafuniyg属于功能生物,是植物根围的关键功能物种AMF)
之一,广泛分布于森林、草原、荒漠、农田、高原等各
1G3]
.研究表明,类生态系统中[AMF能有效促进植
后净光合速率和生物量显著高于不接intraradices)
种对照,AMF通过增强酸性磷酸酶和碱性磷酸酶活性来增加植物对有机养分摄取,增加光合作用,并(以及二者混合接种后,百合株Glomusversiorme)f高、干物质质量、叶绿素含量、过氧化氢酶活性明显增加;同时接种AMF处理显著增强百合的光合作用,其叶片净光合速率、蒸腾速率、气孔导度显著提
]8
.高,且各处理下以混合接种处理效果最优[
7]
.接种摩西斗管囊霉及变形球囊霉促进植物生长[
、、)物对生长发育所需各种矿质营养(和K、CaMFeg
水分的吸收及利用、增强光合作用积累有机物,提高植物对各种不良环境的抗性等,具有独特的生态环保性、经济性优势,是当前园艺生产和植物栽培中的
]4G5
.野樱桃(一种重要辅助手段[PrunusdiscadeG、、欧李(文冠果(nia)P.dictneura)Xanthocerasy和山杏(sorbiolia)Armeniacasibirica)4种采煤塌f后植物株高、地径显著增加;与对照相比,mosseae)
植物根系活力、净光合速率、气孔导度、蒸腾速率、胞间C增强了O2浓度和过氧化氢酶活性均显著提高,(接种根内根孢囊霉(Iomoeacarnea)Rhizohausppg6]
.树牵牛花复垦植物抵抗干旱和高温的能力[
近年来由于人类不断开发土地资源,使得土壤质
量及其可持续性发展力暂时或永久性下降,其中土壤
]9G10
.许多压实是土壤质量下降最普遍的问题之一[
陷区经济植物接种摩西斗管囊霉(Funneliormisf研究表明,土壤压实会导致土壤密度(单位体积土壤的烘干重量)和土壤酸度增加、土壤孔隙率和团聚体
]11G12
,稳定系数降低等[从而降低了土壤含水量、孔13]
,隙度以及土壤速效磷、速效钾含量[阻碍植物根
系吸收营养物质并其向下生长,根系活力下降,
1644西 北 植 物 学 报 39卷
]14G17
.因此,进而影响植物地上部分进行光合作用[
提高植物抵抗逆境能力、修复和稳定土壤生态系统,是值得探究的问题.以往土壤压实研究内容主要集中在森林采伐、土地利用方式等对林业用地和农业生产用地所造成的影响方面,仅着重研究土壤理化性质变化,而对于城市中由机械压实、人为践踏造成的土壤压实对园林植物生理生态的影响研究较
18G19]
.城市土壤压实对植物生长影响的理论和少[
接种势单位,N为单位长度根段内含有的泡囊数
),,量,W为根重(K为单位质量根系长度(cm)Sg
,为单位质量或体积接种剂内孢子数量]对照(CK2)则接种等量灭菌接种物,以保持相同的其他根围微生物区系环境.根据土壤紧实度要求、容器体积及土壤含水量计算出每个处理所需的土壤重量,然后装土,采用木夯锤击压实至试验设计要求.每个处然后置于滤纸上H2O0min进行表面消毒,2浸泡1
理土壤装至离管边3cm处.将高羊茅种子用10%
方法仍处于初级阶段,缺乏系统性分析与研究.高羊茅(Festucaelata物,作为华北、华东和西北中南部等地区大量种植的)为禾本科羊茅属多年生草本植冷季型草坪草,具有较强的耐高温、抗旱、耐盐碱性[20G21]
削减暴雨径流峰值.有研究表、明减少水土流失,高羊茅能够,对防治土壤压实
有效调蓄雨水、
具有重要作用[
22
]下AMF对高羊茅生理生态响应的影响.本试验旨在探究土壤,为压AM实胁F迫在压实土壤中的应用提供理论基础.
材料和方法
.1 试验材料
供试植物为高羊茅(Festucaelata号’,种子购自青岛时创种子有限责任)品种公司‘.艾瑞供试
3AMepgtraradiGes,FF菌种为摩西斗管囊霉(m)和根内根孢囊霉(FunneliformismosseGRhizohausin系及基质中的孢子,Ri
),菌种由三叶、菌丝和菌根根段为接种物草和玉米扩繁,以保存于(其孢子根密度为壤基本123180个/℃高温高压蒸汽灭菌50g,菌丝侵染率为理化性质:2h后的沙质壤土70%).供试土样.土
全钾含量g-1,全氮含量1pH为6.86,有机质含量5.4g磷含量.18-g1kg-1,全磷含量0.4kg-1
kg-1
,
.2 试验方法
4.57m.6ggkkgg-1,,速效钾含量碱解氮含量5506m.2mgggkg-,
1
有效.
试验于棚内进行,采用盆栽试验2017年4~7月在青岛农业大学温室大,依据青岛市城阳区土壤压
实现状将土壤压实处理设置m-34个容重水平,
且土壤容重越小说明土1.2、1.3、1.4、1壤.5有g机质含量越高,结构性越好;在cm-3是土壤结构最好4个容重梯度下,的,可以视为1对.2照
g
(接种CK1、)
[23]根内根孢囊霉.同时,接种处理设置摩西斗管囊霉(Ri)和不接种对照(CKR2i)4接种个水平、二者共同接种,共组成16(个处理F(Fm+
m)组合,随机排列,每个处理重复)
剂量为12000接种势24]
[IP=N×5次.接种W×K+SAM,IF的
[P为
晾干.将进行人工0cm、高520粒高羊茅种子播种至3cm.)
出芽前,根据温,每周浇室湿度PVC管内(内径匀而充足.管理期间注意温度控制在2、~光3照次水和温,度浇水均
状况可遮荫,且通气条件良好,严禁积水.18播~种25℃后,不测定各项指标.
3个月,.3 测定指标及方法
.3.1 AMF侵染率 采集高羊茅根系,洗净,加入间可短%KO)H溶液,,清洗39次0,℃水浴加2%5H~Cl20浸泡min5m(
幼嫩根系时in后,加入微镜下观测菌根侵染率以及菌丝密度.1%酸性品红染色剂,
室温下过夜,加乳酸脱色,显[
25]
菌根侵染率=∑(0×根段数+10%×.根段数0%×根段数+菌根依赖性++/总根段数.重)
菌根植株干重=(.菌根植株干重100%×根段数)
-非菌根植株干/.3.2 形态指标 压实土壤胁迫后测定株高、分蘖数和干重.从培养土的部分开始到植株最高点作为株高.选取的植物记录分蘖数,自来水冲洗干净后,放置在105℃烘箱中杀青10min,转为80℃烘至质量不变,分析天平获得干重.
.3.3 过氧化氢酶活性和根系活力 过氧化氢酶
(片材料catalase,CAT)活性采用紫外吸收法测定,取植物叶高速离心0.5,加入反应液在分光光度计g加2~3mL磷酸缓冲液()吸光度;根系活力采用TTC测定,取根尖样品2p4H70n.m84℃下处测定加入0.4%氯化三苯基四氮唑(TTC)
溶液和磷酸缓0.2g冲液,乙酯提取37℃下暗保温,485nm下比色2h,,
加硫酸终止反应并用乙酸测定吸光度[26
].3.4 叶片光合参数. ~换参数1130.主要包括净光合速率CIRA 选择晴朗少云的天气(:)用光合仪SG3测定高羊茅叶片的气体交9:30
(Pn孔导度(G)、蒸腾速率(T、气.3.5 s)、细胞间隙二氧化碳浓度(Ci叶片叶绿素含量等参数.r)用95%乙醇提取法提取2 高羊茅叶片叶绿素含量
)[6]
.称取新鲜叶0.2g
,剪118021111cak11c11等:土壤压实胁迫下丛枝菌根真菌对高羊茅生理生态的影响9期 徐 萌,1645
碎加少量碳酸钙及石英砂在研钵中研磨,用95%乙
-1
m、离心5m在6rin4℃、in后收集上清液,65、649和470nm下用分光光度计测定吸光度A665、
醇提取,放置黑暗中提取48h.冷冻离心机12000
比接种R25.2%,i处理分别显著提高53.0%和
).可见,图1高羊茅根系能与两种AMF形36.3%(
A649和A470.采用以下公式计算含量:
叶绿素含量Chla=13.95A66.88A665-49;
总叶绿素含量Chl=Chla+Chlb
成良好的共生关系,土壤压实胁迫显著抑制AMF
的侵染,而共同接种能显著促进AMF对根系的侵染,且其接种效果明显优于单一接种.
叶绿素b含量Chlb=24.96A67.32A649-65
2.2 土壤压实胁迫下接种AMF对高羊茅生长的影响
植株高度可反映植物多方面的适应和平衡能力,而干物质含量能够反映植物生态行为差异及获取物质的能力.在同一土壤容重条件下,各接种分蘖数和干AMF处理均可显著增加高羊茅株高、物质质量;随土壤容重的增加,高羊茅株高、分蘖数.其中,和干物质质量均逐渐降低(表1)在土壤容,接种和不接种对照处理(并表现为FCKm+Ri>2)重1.共同接种F5gcm-3胁迫下,m+Ri处理的高羊茅株高、分蘖数、干物质质量最大,显著高于单一此时共同接种FFm>Ri>CKm+Ri处理株高、2;分蘖数、干物质质量比CK6.1%、2分别增加3增加1单一接种或8.1%、39.5%和37.5%.因此,
者共同接种AMF处理均能有效促进土壤压实胁迫
1.4 数据处理
采用Excel2003软件对数据进行处理和绘图,采用DPS7.5和SPSS11.5统计分析软件对数据).进行差异显著性检验(LSD法,α=0.05
2 结果与分析
2.1 土壤压实胁迫对高羊茅根系AMF侵染率与菌丝密度的影响
在AMF摩西斗管囊霉(和根内 图1显示,Fm))根孢囊霉(单一接种或者两者共同接种(RiFm+
相比较,接种Fcm-3处理(CKm、Ri以及共同接种1)
Fm+Ri的高羊茅根系菌根侵染率在土壤容重1.5m-3下分别显著降低了27.8%、39.8%和gc
菌丝密度分别显著降低430.0%,3.8、42.1和43.8个百分点;在同一土壤容重下,共同接种Fm+Ri的高羊茅根系侵染率和菌丝密度最高,接种Fm处理菌丝密度比接种Fm处理分别提高17.3%和次之,接种R在土壤容重1.i处理最低;5gcm-3
胁迫下,共同接种Fm+Ri的高羊茅根系侵染率和
)后,高羊茅根系的菌根侵染率和菌丝密度均随土Ri
壤容重的增加而逐渐降低;与土壤容重1.2g
接种F39.5%和144.0%,m处理分别比CK2增加
接种R29.0%、39.5%和76.0%,i处理比CK2分别
下高羊茅生长,且共同接种效果明显优于单独接种.2.3 土壤压实胁迫下接种AMF对高羊茅根系活
力及过氧化氢酶活性的影响
根系活力水平直接影响植物个体的生长情况、营养状况和产量水平,而体内过氧化氢酶(活CAT)性能一定程度上反映植物受胁迫程度和抵抗逆境的能力.图2显示,在同一接种处理下,高羊茅根系活力和CAT活性随土壤容重的增加均呈逐渐降低的
共同接种摩西斗管囊霉和根内根孢囊霉;Ri.单独接种根内根孢囊霉;Fm.单独接种摩西斗管囊霉;Ri+Fm.
不接种对照;不同小写字母表示不同处理组合间在0.CK.05水平存在显著性差异.下同
,;RhizohausintraradicesandFunneliormismosseae;CK.ControlnonGinoculationThedifferentnormallettersindicatepgfRi.InoculationwithRhizohausintraradices;Fm.InoculationwithFunneliormismosseae;Ri+Fm.Inoculationwithpgf;sinificantdifferenceamonreatmentcombinationsat0.05levelThesameasbelowggt
图1 土壤压实胁迫下高羊茅根系AMF侵染率与菌丝密度
Fi.1 AMFcolonizationandhhaldensitinrootsofFestucaelataundersoilcomactionstressgypyp
1646西 北 植 物 学 报 39卷
表1 土壤压实胁迫和接种AMF处理下高羊茅生长状况
Table1 ThegrowthofF.elataundersoilcomactionstressandinoculationwithAMFp
接种处理
Inoculationtreatment
土壤容重
Soilcomactionp/(cm-3)g(1.2CK1)
1.31.4(1.2CK1)
1.51.31.4(1.2CK1)
1.51.31.4(1.2CK1)
1.31.41.51.5
株高
Plantheihtg
/cm
分蘖数
Tillernumber5.0±0.0e4.7±0.3e4.3±0.3e7.3±0.3bc7.7±0.3ab6.7±0.3cd6.0±0.0d6.3±0.3d6.3±0.3d6.0±0.0d8.3±0.3a4.3±0.3e
干物质质量
Dratterym
/ualitqyg
菌根依赖性
Relativemcorrhizaly
/%deendencpy
0002318194315950
不接种对照
NonGinoculation
control(CK2)
28.6±1.8efg27.9±1.4hg23.8±1.6h37.0±2.0ab
30.8±1.2defg
0.41±0.03ef0.41±0.01ef0.39±0.02f0.25±0.00g
摩西斗管囊霉F.mosseae(Fm)
35.3±2.3abc33.1±2.0bcd30.7±1.4defg
0.50±0.02cd0.48±0.00cd0.44±0.02def
0.53±0.02c
34.0±0.8abcd29.9±1.1defg28.1±1.0fhg38.4±1.0a
根内根孢囊霉R.intraradices()Ri
32.9±1.5bcde
7.3±0.3bc0.48±0.01cd0.41±0.01ef0.40±0.00ef0.74±0.03a0.74±0.06a
0.45±0.00de
3845454059
混合菌种F.mosseae+R.intraradices()Fm+Ri
35.4±1.3abc
32.7±1.5bcde32.4±1.7cdef
8.0±0.0ab7.7±0.7ab6.0±0.0d
0.65±0.02b0.61±0.03b
:;NoteThedifferentnormalletterswithinsamecolumnindicatesinificanceamonreatmentsat0.05levelThesameasbelowggt
注:同列不同小写字母表示处理间在0.05水平差异显著.下同
趋势;在相同土壤容重条件下,接种AMF处理的高不同程度增加,且共同接种处理均高于单独接种处、RiFm、Ri接种处理的高羊茅根系活力在土壤容重
1.5gcm-3时分别比未接种对照CK2提高46.2%、34.6%和15.4%,CAT活性分别比CK2提
、高5且F3.2%、27.9%和9.3%,m+RiFm接种处理均达到显著水平.可见,接种AMF可以提高高
羊茅根系活力和根系C从而增强高羊茅AT活性,清除H2O并以共同接种2和应对压实胁迫的能力,理,表现为Fm+Ri>Fm>Ri>CKFm+2.其中,
Fi.2 TherootactivitndcatalaseactivitfF.elatainoculatedwithAMFundersoilcomactionstressgyayop
图2 土壤压实胁迫下接种AMF高羊茅根系活力和过氧化氢酶活性的变化
羊茅根系活力和CAT活性均比未接种对照(CK2)
的效果更佳.
2.4 土壤压实胁迫下接种AMF对高羊茅叶片叶
绿素含量的影响
各接种AMF处理均不同 在同一土壤容重下,
、程度增加了高羊茅叶片叶绿素ab以及总叶绿素含、叶绿素a叶绿素b含量和总叶绿素含量呈现逐渐/.其下降的趋势,但叶绿素a表2)b变化不明显(
量,不同接种间表现为Fm+Ri>Fm>Ri>CK2;
在同一接种处理下,随土壤容重的增加,高羊茅叶片
中,在土壤容重1.共同接种F5gcm-3条件下,m
叶绿素a和叶绿+Ri处理的高羊茅叶片总叶绿素、
等:土壤压实胁迫下丛枝菌根真菌对高羊茅生理生态的影响9期 徐 萌,1647
素b含量分别比相应CK9.3%、43.1%和2增加了5
接种F100.0%,m处理则分别增加了38.5%、
接种R27.7%和65.4%,i处理分别增加23.1%、15.4%和4接种2种AM2.3%.由以上结果可知,F均能不同程度促进土壤压实胁迫下高羊茅叶片光合色素合成,明显提高叶片叶绿素含量,且共同接种效应明显
2.5 土壤压实胁迫下接种AMF对高羊茅叶片光
合气体交换参数的影响
在同一土壤容重下,接种AMF均 由图3可知,
增加了高羊茅叶片Pn、而降低了C在同一Tr、Gs,i;
优于单独接种,且接种Fm处理又优于接种Ri处理.
表2 土壤压实胁迫下接种AMF高羊茅叶绿素含量的变化
叶绿素a含量
Chlorohllapy
-1)/(mgg
叶绿素b含量
Chlorohllbpy
-1)/(mgg
接种处理下,随土壤容重的增加,高羊茅叶片Pn、
Table2 ThecontentsofchlorohllinleavesofF.elatainoculatedwithAMFundersoilcomactionstresspyp
接种处理
Inoculationtreatment
土壤容重
Soilcomactionp
-3)/(cmg(1.2CK1)
1.31.4(1.2CK1)
摩西斗管囊霉
(F.mosseaeFm)
1.31.4(1.2CK1)
根内根孢囊霉()R.intraradicesRi
1.31.4(1.2CK1)
1.31.41.51.51.51.5
总叶绿素含量
Totalchlorohllpy
-1)/(mgg1.49±0.09cd1.46±0.02cd1.00±0.01fg0.91±0.09g
/叶绿素ab
/Chlorohllabpy
2.02.02.22.52.11.52.01.92.11.82.02.02.01.41.61.8
1.00±0.04efg0.69±0.05fg0.65±0.01g
不接种对照
NonGinoculation
(controlCK2)
0.98±0.07cde
0.49±0.05cdef0.48±0.01cdef0.31±0.03fg0.26±0.04g
1.20±0.03ab
1.02±0.02cde0.83±0.04efg
0.57±0.02cde0.46±0.06def0.43±0.02def
0.90±0.06defg1.05±0.03bcd0.99±0.01cde0.75±0.06g0.85±0.01defg1.64±0.08a1.32±0.02a1.22±0.06abc0.93±0.05def
0.68±0.02bcd
1.77±0.05bc1.70±0.02bc1.36±0.02def1.26±0.06def1.56±0.04bcd1.53±0.02bcd1.27±0.01def1.12±0.02fg2.46±0.02a2.26±0.03a
0.51±0.05cde0.54±0.04cde0.42±0.01def0.37±0.02efg0.82±0.01ab0.94±0.01a
混合菌种
F.mosseae+R.intraradices()Fm+Ri
0.75±0.02bc
0.52±0.03cde
1.97±0.01ab
1.45±0.07cde
Fi.3 ThePn,Tr,CndGnleavesofF.elatainoculatedwithAMFundersoilcomactionstressgpiasi
图3 土壤压实胁迫下接种AMF高羊茅叶片Pn、Tr、Ci和Gs的变化
1648西 北 植 物 学 报 39卷
在土壤容重Tr、Ci和Gs均呈现下降的趋势.其中,
、接种F1.5gcm-3条件下,m、RiFm+Ri处理的
会造成膜脂过氧化,并产生H2O植物体自2等物质,
]33
(.本试验观测等来维持膜结构的完整性[CAT)到,随着土壤容重的增加,高羊茅叶片CAT活性逐
身防御机制内存在着清除活性氧的过氧化氢酶
其Tr分别增加122.5%、52.5%,9.0%、23.8%、
其Gs分别增加133.3%,09.4%、58.7%、181.1%,而其叶片C且.2%、6.7%、32.9%,i则分别降低5单一接种或者共同接种两种AMF均可增加土壤压实胁迫下高羊茅叶片光合参数Pn、且共同接Tr、Gs,共同接种处理各指标变化均达到显著水平.可见,
高羊茅叶片Pn分别比相应对照(增加3CK3.8%、2)
(生长后期抗氧化酶活性逐渐Ziniberoicinale)gff降低结果一致,表明土壤压实胁迫下,细胞中H2O2积累到一定程度,会使抗氧化酶的结构破坏或活性降低.接种AMF均能缓解土壤压实胁迫,能有效34]
渐下降,这与尚庆文等[研究在土壤压实下生姜
种处理的效应优于单独接种.
讨体,它在侵染植物根系形成共生体过程中AM 论
F是高等植物根系与土壤真菌形成的共生
,通过调节植物生理生化代谢途径与基因表达能力,改善植物营养状况,提高植物抗逆性,改善生态环境安全性,
保持和增强生态系统可持续生产力[
27G29]
究表明,土壤压实后土壤容重增大、孔隙度减少.相关,研显著抑制植物生长,并且压实土壤环境不利于植物根
系的伸展和发育,影响根系的活性[
30]
植物对逆境最直观的表现症状之一,.本试验结果表生长抑制是明在土壤压实胁迫下,高羊茅株高、分蘖数及生物量显著降低,接种、分蘖数AMF能显著提高土壤压实胁迫下
高羊茅的株高、干重、根系过氧化氢酶活性以及根系活力.已有研究证明,AMF菌丝具有吸收水分和运输养分的功能,能够改善植物营养健康
状况,显著促进植物生长,如接种(Artemisiaordosica)
生长量和根AM系F可增加油蒿活3力[31]2
]也证实F能够改善柑橘(Citrus)
根系结构[.本;接研种究力,缓解土壤压实胁迫AMF能够显著提高高羊茅生长量及根系活,这可能是成了稳定的共生体结构,广泛的菌丝网络有利于植AMF与高羊茅形物对压实土壤中养分和水分的吸收和利用,进而促进植物生长.
同时,土壤压实会使土壤含水量下降、通气性变差,而寄主植物的侵染AMF是一种好氧菌,缺氧的情况下会降低对.本试验表明共同接种+R.intraradicesF.mosseae在低土壤容重下侵染率最高,
这可能是压实后土壤含水量和低氧的土壤环境F对植物根系的侵染,
并且不同种类的不同土壤容重适应范围,而共同接种处理的菌根侵AMF有染率比单一菌接种处理高,菌丝密度大,吸收能力强,更有利于植物的生长.研究表明,植物体受到不良环境胁迫时会产生大量的活性氧,活性氧的积累
提高土壤压实胁迫下植物抗氧化酶活性,减轻土壤压实胁迫对植物生长的伤害.
另外,光合作用是植物生长发育的基础.叶绿素是植物光合作用的重要色素,能够捕捉、传递、转化光能,并将其转化为光合产物积累在植物体
内[35]
物光合作用.环境胁迫下叶绿素含量会显著降低,其中气体交换参数可作为植物对不良,影响植
环境耐受力的重要指标.本研究发现土壤压实胁迫下高羊茅叶片叶绿素含量降低,阻碍了光合色素合成和光合成电子成分传递,导致叶片气孔阻力增加,从而使CO2进入气孔受阻,细胞间CO2浓度下降,使得叶片蒸腾速率和净光合速率下降,光合作用降
低,进而抑制植株的生长,这与刘爽等[36]
在城市土
壤压实对乐昌含笑(()和大MicheliachapensisM.maudiae叶冬青(Ilexlatifoli)a、深山含笑含量和光合作用影响的研究结果一致.在)叶本绿研素究中,接种叶片净光AM合速F能显著提高土壤压实胁迫下高羊茅
率(Pn率,其他研究也发现了这一结果)
,能够有效[37改G38
]善表明在胁迫条件下;另外单位,光有研究
合效素含量[39
]土壤压实胁迫下高羊茅叶绿素,而本研究也发现接种AMF能够提高植物叶片的叶绿
AMF能显著提高.接种AMF能提高高羊茅a叶、b以及总叶绿素含量绿素含量、增强叶片的净光合速率、气孔导度和蒸腾速率,并增加生物
量.接种浓度降低,
ar等[40
]
的研究发现AMF后胞间,当CPO2根据n和Ci变化趋势相同时FarquG,
n下降是气孔因素引起,
由此可以看出,高羊茅叶片中Gs增加并不是Pn增强的主要原因,这有可能
是叶绿素含量的升高,进一步提升了光捕获能力.同时证明AOM2F能够调节寄主植物的气孔开放程度,从而影响C浓度来控制植物的光合作用,在一定程度上使植物免受土壤压实胁迫所造成的伤害.
综上所述,土壤压实胁迫条件下,共同接种F.
osasea叶e+绿R素.inbtraradices可以提高高羊茅叶片叶绿
素、以及总叶绿素含量,增加净光合速
3AMhPAMm等:土壤压实胁迫下丛枝菌根真菌对高羊茅生理生态的影响9期 徐 萌,1649
率、蒸腾速率以及气孔导度,提高根系活力;同时接种AMF可以提高C从而缓解土壤压实胁AT活性,迫对高羊茅造成的过氧化伤害,促进植物生长,提高
植株的生物量.对于土壤压实胁迫下接种AMF高羊茅对水分吸收、营养物质利用以及相关基因表达的遗传适应机制等有待进一步深入研究.
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