新城疫油苗和冻干苗疫苗的生产工艺流程

1 生产用毒种制备

1.1 毒种繁殖 将毒种用灭菌生理盐水作适当稀释(如10-4或10-5),尿囊腔内接种10日龄SPF鸡胚,每胚0.1ml。选接种后72~120小时死亡、且病痕明显的鸡胚,分别收获鸡胚液(尿囊液及羊水),装于灭菌容器内。将检验无菌、且对1%鸡红细胞凝集价≥1:0(微量法1:512)的鸡胚液混合,定量分装于安瓿中,冷冻保存。注明收获日期,毒种代数等。 1.2 毒种鉴定

1.2.1 病毒含量 按含毒鸡胚液量用灭菌生理盐水作为10倍系列稀释，取10-7、10-8、10-9 3个稀释度各尿囊腔内接种10日SPF鸡胚5个，每胚0.1ml，置36~37℃继续孵育，48小时以前死亡的鸡胚弃去不计，在48~120小时死亡的鸡胚随时取出，收获鸡胚液，同一稀释度 的胚液等量混合，按稀释度分别测定红细胞凝集价，至120小时，取出所有活胚,逐个收获 鸡胚液，分别测定红细胞凝集价，凝集价≥1:160 (微量法1:128)者判为感染，计算EID50，每0.1ml病毒含量应≥108EID50。

1.2.2 纯净 应无细菌、霉菌、支原体和外源病毒污染，分别按《无菌检验或纯粹检验标准操作规程》、《支原体检验标准操作规程》、《外源病毒检验标准操作规程》进行。 1.3 毒种保存 在-15℃以下保存,应不超过1年。 1.4 毒种继代 应不超过3代。

2 制苗材料选择 选择发育良好的9~11日龄SPF鸡胚作为制苗材料。 3 制苗用毒液的制备

3.1接种 取生产用毒种用灭菌生理盐水作适当稀释(如10-4或10-5),每胚尿囊腔内接种0.1ml，接种后密封针孔，置36~37℃继续孵育，不必翻蛋。

3.2 孵育和观察 鸡胚接种后,每日照蛋一次，将在60小时前死亡的鸡胚弃去。60小时后,每4~8小时照蛋一次,死亡的鸡胚随时取出,直至96或120小时,不论死亡与否,全部取出,气室向上直立,置于2~8℃冷却。

3.3 收获 将冷却4~24小时的鸡胚取出,用碘酊消毒气室部位,然后以无菌手术剥除气室部卵壳，剪开尿囊膜，吸鸡胚液,每若干个鸡胚的胚液混合为一组。收获后的胚液置于灭菌瓶中，作好标识，留样后，结冻保存。

在收获胚液的同时, 应逐个检查鸡胚, 如胎儿、胚液混浊及有任何污染可疑者弃去不用。

4 半成品检验

4.1 无菌检验 经处理过的胚液,每组分别取样,按《无菌检验或纯粹检验标准操作规程》进行无菌检验,应无细菌生长。 4.2 病毒含量测定

按含毒鸡胚液量用灭菌生理盐水作为10倍系列稀释，取10-7、10-8、10-9 3个稀释度各尿囊腔内接种10日SPF鸡胚5个，每胚0.1ml，置36~37℃继续孵育，48小时以前死亡的鸡胚弃去不计，在48~120小时死亡的鸡胚随时取出，收获鸡胚液，同一稀释度的胚液等量混合，按稀释度分别测定红细胞凝集价，至120小时，取出所有活胚,逐个收获鸡胚液，分别测定红细胞凝集价，凝集价≥1:160 (微量法1:128)者判为感染，计算EID50，每0.1 ml病毒含量>107EID50者可用于配制疫苗。 5 配苗及分装

将检验合格的若干组鸡胚液滤过,混合于同一容器内,按规定羽份,加一定比例的蔗糖脱脂奶粉作稳定剂,使其最终蔗糖含量为2.5%，脱脂奶粉含量为5%，同时加入适宜的抗生素,充分摇匀,定量分装,每羽份病毒含量应≥106EID50。分装后迅速进行冷冻真空干燥。 6 成品检验 6.1 物理性状

6.1.1 外观检查 疫苗瓶上的标签，打印出的羽份或头份、生产批号、有效日期清晰可见、位置适当。瓶上的铝盖稳固不松动。

6.1.2 眼观检查 将疫苗拿到与眼平行位置观察呈微黄色，海绵状疏松团块，然后再轻微振动，疫苗松动并与瓶壁分离，判为合格。

6.1.3 溶解性检查 用稀释液注射到疫苗瓶内，经轻微振动，疫苗应迅速完全溶解，无粘块或粘团出现，判为溶解性良好。

6.2 无菌检验 按《无菌检验或纯粹检验标准操作规程》进行，如有菌生长，应进行杂菌计数，并作病原性鉴定（按《杂菌计数和病原性鉴定操作细则》进行）和禽沙门氏菌检验每羽份非病原菌数应不超过1个（按《禽沙门氏菌检验法》进行）。 6.3 支原体检验 按《支原体检验法》进行，应无支原体生长。 6.4 鉴别检验

6.4.1 选择发育良好的10日龄SPF鸡胚10只，划出尿囊腔接种部位。

6.4.2 将疫苗用无菌生理盐水稀释至105.0EID50/0.1mL，与等量抗鸡新城疫病毒特异性血清混合，室温中和1小时后，尿囊腔接种，每胚0.1mL。

6.4.3 将接种后鸡胚用石蜡封孔后，置37℃继续孵育，观察120小时，在24~120小时内应

不引起特异死亡，且至少存活8只，鸡胚液作红细胞凝集试验，应为阴性。 6.5 外源病毒检验 按《外源病毒检验法》进行。 6.6 安全检验 下列方法任择其一。

6.6.1 用鸡胚检验 将疫苗用无菌生理盐水稀释，尿囊腔内接种10日龄鸡胚10只，每胚0.1ml（含10个使用剂量），接种后24~72小时，鸡胚死亡率应不超过20%为合格。如死亡率超过20%，可用20个鸡胚重检1次，重检结果死亡率仍超过20%，该批疫苗判为不合格。 6.6.2 用鸡检验 用2~7日龄SPF雏鸡20只，合成两组，第1组10只，每只滴鼻接种0.05mL（10个使用剂量）；第2组10只，不接种作为对照，两组在相同条件下分别饲养管理，观察10日，应无不良反应。如有非特异性死亡，免疫组与对照组均不超过1只。 6.7 效力检验 下列方法任择其一。 6.7.1 用鸡胚检验

6.7.1.1 鸡胚选择 选择发育良好的10日龄SPF鸡胚15个，划出尿囊腔接种部位，作出批组及滴度标记，每一滴度接种5个。

6.7.1.2 疫苗稀释 将疫苗按瓶签注明羽份，用灭菌生理盐水稀释至1羽份/0.1mL，再作10倍系列稀释至10-7。

6.7.1.3 接种 分别取10-7、10-6、10-5三个稀释度尿囊腔内接种鸡胚各5个，每胚0.1mL，用石蜡封孔。

6.7.1.4 孵育 置37℃继续孵育至120小时，每天上、下午各照检1次，48小时以前死亡的鸡胚弃去不计，在48~120小时死亡的鸡胚，随时取出放在2~8℃冰箱中，至120小时取出全部活胚放在2~8℃℃冰箱中24小时。

6.7.1.5 凝集价（HA）测定与计算鸡胚半数感染量（EID50） 将冷却鸡胚取出，将同一稀释度的死亡鸡胚液等量混合，分别测定红细胞凝集价；将活胚逐个收获鸡胚液，分别测定红 细胞凝集价，HA≥160（微量法128）者判为感染，计算半数感染量，每羽份≥106.5EID50（国家标准每羽份≥106.0EID50），判为合格。 6.7.2 用鸡检验

6.7.2.1 鸡的选择 选取30-60日龄健康易感鸡（血凝集抑制价应≤4）10只。

6.7.2.2 疫苗稀释 将疫苗按瓶签注明羽份，用灭菌生理盐水稀释成每0.05mL含1/100使用剂量。

6.7.2.3 免疫及攻毒 每只鸡滴鼻接种0.05mL，10~14日后，连同条件相同的对照鸡3只，各肌肉注射鸡新城疫北京株强毒104.0ELD50，观察10-14日，对照鸡全部发病死亡，免疫鸡至少保护9只为合格。

6.8 剩余水分测定 按《剩余水分测定方法》进行，应符合规定。 6.9 真空度测定 按《真空度测定方法》进行，应符合规定。

鸡新城疫低毒力活疫苗生产工艺流程图、主要过程控制点和控制项目

种蛋消毒 种蛋选择 * SPF种胚 *接 种 照蛋时间 *后孵化及照蛋 培养温湿度 冷蛋时间 *冷 蛋 冷蛋温度 铝盖 分装瓶 清洗 纯化水粗洗 注射水洗 *灭菌 *隧道烘箱灭菌 物理性状 安全检验 无菌检验 前孵化 接种途径 接种剂量 无菌检验 病毒含量 收 获 -15℃冷冻保存 保护剂 胶 塞 配 苗 无菌检验 粗 洗 分装前、中、后无检 纯化水洗 分 装 *脉动蒸汽灭菌 加 塞 干 燥 冻 干 出 箱 压 盖 外源病毒检验 贴 签 效力检验 检 验 抽 样 装箱入库 注：*为关键控制点 为控制项目 新城疫灭活疫苗生产工艺流程

1 生产用毒种制备

1.1 毒种繁殖 将毒种用灭活生理盐水作适当稀释（如10-4或10-5），尿囊腔内接种10日龄SPF鸡胚，每胚0.1ml。选接种后72～120小时之间死亡且病痕明显的鸡胚，分别收获鸡胚液（尿囊液及羊水），装于灭菌容器内。将检验无菌，且对1%鸡红细胞凝集价在1：0（微量法1：512）以上的鸡胚液混合，定量分装于安瓿瓶中，冷冻保存。注明收获日期、毒种代次等。 1.2 毒种鉴定

1.2.1 病毒含量 按含毒鸡胚液量用灭菌生理盐水作为10倍系列稀释，取10-7、10-8、10-9 3个稀释度各尿囊腔内接种10日SPF鸡胚5个，每胚0.1ml，置36~37℃继续孵育，48小时以前死亡的鸡胚弃去不计，在48~120小时死亡的鸡胚随时取出，收获鸡胚液，同一稀释度 的胚液等量混合，按稀释度分别测定红细胞凝集价，至120小时，取出所有活胚,逐个收获 鸡胚液，分别测定红细胞凝集价，凝集价≥1:160 (微量法1:128)者判为感染，计算EID50，每0.1ml病毒含量应≥108EID50。

1.3 毒种保存 在-15℃以下保存，应不超过6个月。 1.4 毒种继代 应不超过3代。

2 制苗材料选择 选择发育良好9～10日龄的易感鸡胚作为制苗材料。 3 制苗用毒液的制备

3.1 接种 取生产用毒种，用灭菌生理盐水作适当稀释（如10-4或10-5），每胚尿囊内接种0.1ml，接种后密封针孔，置36～ 37℃继续孵育，不必翻蛋。

3.2 孵育和观察 鸡胚接种后，每日照蛋1次，将60小时前死亡的鸡胚弃去。此后，每4～6小时照蛋1次，死亡的鸡胚随时取出，直至96小时，不论死亡与否，全部取出，气室向上直立，置于2～8℃冷却4～24小时。 3.3 收获

3.3.1 鸡胚液的收获 将冷却的鸡胚取出，用碘酊消毒气室部位，然后以无菌手术破除气室部卵壳，揭去卵壳膜，剪破绒毛尿囊膜及羊膜（谨防卵黄破裂），吸取胚液。对每个鸡胚在 吸取胚液前均应注意检查，凡胎儿、胚液混浊及有任何污染可疑者，弃去不用。

死胚和活胚分别收获，每若干个鸡胚分为一组，吸取胚液放于同一灭菌的容器内，每组抽样测定血凝价，血凝价低于1：160（微量法1：128）者应弃去。同时作无菌检查，应无细菌生长。收获的胚液灭活前在2～8℃左右保存，应不超过5日。

3.3.2 鸡胚胎儿收获及浸出液的制备 在收获及胚液的同时，取病变胎儿，去头、脚，用生理盐水洗2～3次，磨碎，制成（1：5）～（1：10）乳剂，加适宜的抗生素适量，然后离心或以4层纱布一层铜纱网滤过，置自然沉淀1～2日，然后取样作无菌检查。以上清夜作为配制双相油乳剂疫苗用。

4 灭活 将上述无菌胚液以4层纱布及一层细铜纱网滤过，混合于一个大玻璃瓶内，吸出数毫升样品备测毒价。其余胚液和鸡胚浸出液分别计量加入10%甲醛溶液，随加随摇，使其能充分混合，甲醛溶液的最终浓度为0.1%。加甲醛溶液后最好倾倒另一瓶中，以避免瓶口附近黏附的病毒未能接触灭活剂。然后在37℃灭活16小时（以瓶内温度达到37℃开始计时）。期间振摇3～4次。在2～8℃保存，应不超过1个月。 5 半成品检验

5.1 无菌检验 取灭活的胚液及鸡胚浸出液分别按附录448进行，应无菌生长。

5.2 灭活检验 取10日龄无新城疫病毒抗体的鸡胚6个，每个接种灭活胚液0.23ml，每日照蛋2次，观察5日，鸡胚非特异死亡不应超过1个。对所有胚液分别测定血凝价，应不出现血凝，认为灭活完全。如有可疑，应将可疑胚液进行重检，重检不合格者报废。鸡胚浸出液也按照上述方法检查。

5.3 毒价测定 将灭活前取出的胚液进行10倍系列稀释，取10-7、10-8、10-93个稀释度分别接种9～10日龄无鸡新城疫病毒抗体的鸡胚5个，每胚尿囊内0.1ml，每日照蛋2次，观察5日，无论死胚、活胚均应测定血凝价，血凝价〉1：80（微量法1：）以上者，判为感染，计算EID50,每0.1ml病毒含量≥108 EID50,方可用于制苗。 6 单相油乳剂灭活疫苗制备

6.1 油相制备 取注射用白油94份，加司本-80 6份，混合后，加硬脂酸铝2份，随加随搅拌至透明为止，高压灭菌备用。

6.2 水相制备 取吐温-80 4份装入带玻璃珠的瓶中灭菌，冷却后加灭活胚液96份，充分振瑶使吐温-80完全溶解为止。

6.3 乳化 取油相3份放于乳化罐内，开动电机慢速转动搅拌，同时徐徐加入水相1份，加完后再以10000r/min搅拌2～5分钟，在终止搅拌前加入1%硫柳汞溶液，使其最终浓度为0.01%。乳化后，取3～5ml以3000r/min离心15分钟，若有分层现，应重复搅拌1次。 7 双相油乳剂疫苗制备 7.1 用乳化罐乳化

7.1.1 水相、油相制备同单相苗，但水相制备中，鸡胚液是按4%加入吐温，而鸡胚浸出液

则按6%加吐温。

7.1.2 取油相2份放入乳化罐内，开动电机慢速转动搅拌，同时徐徐加入胚液1份，加完后再以10000r/min搅拌。

7.1.3 取鸡胚浸出液（单相苗鸡胚液等量）放于乳化罐，开动电机缓缓加入上述油包水单相苗，加完后再以10000r/min搅拌2～5分钟，在终止搅拌前加入1%硫柳汞溶液，使最终浓度为0.01.%。乳化后取3～5ml以3000r/min离心10分钟，若分层严重应再搅拌1次。 7.2 用乳化罐乳化。

8 分装 定量分装，加盖密封。 9 成品检验 9.1 物理性状

9.1.1 外观 为乳白色乳剂。

9.1.2 剂型 单相苗为油包水型。取一清洁吸管，吸取少量疫苗滴于冷水中，应呈油滴状不扩散。双相苗为水包油包水型，滴于冷水中，应呈云雾状扩散。 9.1.3 稳定性 在37℃左右条件下放置21日，应不破乳。

9.1.4 粘度 用1ml吸管（出口内径1.2mm），吸取25℃左右的疫苗1ml，令其垂直自然流出，记录流出0.4ml所需时间。单相苗在8秒以内，双相苗在5秒以内为合格。 9.2 无菌检验 按《无菌检验或纯粹检验标准操作规程》进行，应无菌生长。

9.3 安全检验 用30～60日龄健康易感鸡（HI抗体≤1：4）6只，各肌肉或颈部皮下注射疫苗1ml，观察14日，应不出现由疫苗引起的任何局部和全身不良反应。

9.4 效力检验 用30～60日龄健康易感鸡（HI抗体≤1：4）15只，其中10只各皮下或肌肉注射疫苗20μl（用0.5ml以下的注射器注射），另5只不免疫作对照，21～28日后，连同条件相同的对照鸡5只，各肌肉注射105ELD50强毒，观察14日，对照组全部死亡，免疫组至少保护7只为合格。

9.5 甲醛含量测定 按《甲醛含量测定法》进行，应符合《制品检验的有关规定》。

鸡新城疫灭活疫苗生产工艺流程图、主要过程控制点和控制项目

种蛋消毒 种蛋选择 前孵化 无相应抗体 *非免疫种蛋 接种途径 *接 种 接种剂量 无菌检验 照蛋时间 *后孵化及照蛋 培养温湿度 毒价测定 冷蛋时间 *灭活 收 获 *冷 蛋 冷蛋温度 铝盖*油相制备 *水相制备 分装瓶 *乳化 清洗 清洗 分装前、中、后无检 *灭菌 *灭菌 *分 装 加 塞 物理性状 压 盖 无菌检验 抽 样 *贴 签 安全检验 效力检验 *检 验 甲醛含量测定 硫柳汞含量测定

注：*为关键控制点 为控制项目 灭活检验 -15℃冷冻保存 胶 塞 清 洗 *脉动蒸汽灭菌 *装箱入库

附录

1.剩余水份测定法

1 技术依据及原理

卡氏法是利用卡氏试剂中的碘和二氧化硫在砒啶和甲醇溶液中能与水起定量反应的原理，从而测定水份。

2 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 2.1 仪器及设备

电子分析天平（精度0.1mg，称量范围0～110g），费休水份滴定仪(梅特勒DL31)。 2.2 试剂

卡氏试剂、无水甲醇，纯水。 2.3 检验器具

止血钳（开启苗瓶），玻璃棒（或能捣碎检品的器具），10ul注射器，烧杯。 2.4 样品 每批疫苗4个样品。

2.5 其它 检验记录纸、笔、纱布和汗布手套。 3 检验步骤

3.1 接通电源、打开费休水份滴定仪(梅特勒DL31)主机、打印机、天平开关。 3.2 按滴定仪的RUN键滴定仪自动滴定至终点。

3.3 滴定仪屏幕显示待机模式Drift值在25以下指示箭头稳定→(平指)时，开始滴定标定滴度：

3.3.1 按F2键至显示屏出现H2O ISO 3696

3.3.2 连续按F3键至显示屏出现please add sample 0.0100 g

3.3.3 天平去皮，通过进样孔注入已称重的纯水，(用10µl注射器抽取10µl纯水置天平称重) 注射器放回天平后按F3; 3.3.4 按F1自动输入样品量； 3.3.5 按F2显示样品重量； 3.3.6 按F3确认样品重量；

3.3.7 滴定至终点自动打印出结果，打印结束按F3返回到待机模式； 3.3.8 重复标定只需依上述第1条开始同法操作。

3.4 水份测定： 3.4.1 将样品置天平称重

3.4.2 连续按F3键，显示屏出现please add sample 0.0000g～5.000g;

3.4.3 天平去皮后通过进样口将已称重的样品加入滴定杯中，将载样杯放回天平。 3.4.4 按F3预滴定 3.4.5 按F1自动输入样品量 3.4.6 按F2显示样品重量 3.4.7 按F3 确认样品重量

3.4.8 滴定至终点自动打印出结果，打印结束，按F3返回到待机模式 3.4.9 测定下一个样品只需依上述4.4.1开始，同法操作。 4记录与计算 5结果判定

每瓶样品含水量不得超过4.0％，如有超过时，可重检一次。

2.真空度测定法

1 技术依据及原理

依据《兽用生物制品质量标准》附录中的真空度测定法，即使用高频火花真空测定器测定。它的基本原理是利用本仪器振动形成火花束，激励谐振荡回路，使次线线圈感应出高频高压脉冲电压，使被检物产生不同颜色的辉光，根据颜色的变化来判断疫苗的真空度。 2 注意事项

2.1 按照规定要求，在检验过程中至少要有一名检验员和一名复核员共同进行，确保检验结果的准确性。

2.2 检验要在光线较暗的操作室里进行，便于结果判定的准确性。

2.3 被检样品从冷库中取出应擦干瓶壁上的水份，样品达到室温后再进行测定。 3 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器及设备

电火花真空检测器。 3.2 样品 所有被检样品。 3.3 检验记录纸、笔。 4 检验步骤

4.1 取待检样品，一字排列于暗室的操作台上，使瓶与瓶之间有一定距离。 4.2 将真空检测器尾部电源插头插入220V电源插座里。

4.3 将放电簧头对准被检样品（簧头不要触到瓶壁），打开开关，间歇适用（时开时关）。 4.4 观察并记录逐瓶样品的真空状态。 5 安全措施

5.1 使用真空检测器时，人体不要接近仪器的头部电簧，以免高频电流的电击，（但没有生命危险）。

5.2 测定样品真空时，检测器必须缓慢移动，放电簧不应在一点停留时间过长，以免把玻璃击穿，影响样品本身的效果。

5.3 测定样品真空时，注意远离疫苗瓶上的金属帽，否则会造成错误信号，甚至在金属处将玻璃击穿而造成漏洞。 6 结果判定

如果容器内出现白色、粉色或紫色辉光，则真空度检查合格。

3.无菌检验和纯粹检验

1 技术依据及原理:

生物制品（除另有规定者外）都不应有外源微生物污染。灭活疫苗不得含有活的本菌或本毒。各类生物制品必须按规定作无菌检验或纯粹检验，全部操作应在无菌条件下进行。 2 注意事项

2.1 抽样后逐瓶检查包装、胶塞、瓶签有无破损和毁坏，瓶内有无杂质。 2.2 为防止交叉污染，一个样品用一个吸管或一个注射器。 2.3 各类生物制品的检验操作应在无菌条件下进行。 2.4 检验过程要仔细、认真。

2.5 保持实验室的清洁卫生，严格遵守常规的消毒制度。 3 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器

24～26℃、36～38℃温箱，检验器具，试管架，10ml、5ml、1ml吸管，记号笔，记录纸。 3.2 检验用培养基 3.2.1 无菌检验

厌氧性及需氧性细菌的检验 用含硫乙醇酸盐培养基（简称T.G）和酪胨琼脂培养基(简称G.A)。

霉菌及腐生菌检验 用葡萄糖蛋白胨汤（简称G.P）。 3.2.2 纯粹检验 用适宜本菌生长的培养基。 4 检验步骤

4.1 抽样 应随机取样并注意代表性。

4.1.1 制造疫苗用的各种原菌液、毒液和其它配苗组织乳剂、稳定剂及半成品的无菌或纯粹检验，应每瓶（罐）分别抽样进行，抽样量为2～10ml。

4.1.2 成品的无菌或纯粹检验应按每批或每个亚批进行，每批按瓶数百分之一抽样，但不应少于5瓶，最多不超过10瓶，分别进行检验。 4.2 检验用培养基 4.2.1 无菌检验

4.2.1.l 厌氧性及需氧性细菌的检验 用硫乙醇酸盐培养基（T.G）及酪胨琼脂（G.A）。 4.2.1.2 霉菌及腐生菌检验 用葡萄糖蛋白胨汤（G.P）。 4.2.2 活菌纯粹检验 用适于本菌生长的培养基。

4.2.3 灭活检验 用适于本菌生长的培养基，或对本毒敏感的细胞、组织和动物。 4.2.4 杂菌计数 用马丁琼脂或G.A培养基。

4.2.5 病原性鉴定 用T.G培养基或其他适宜培养基。 4.3 检验方法及结果判定

4.3.l 细菌原菌液及活菌苗半成品的纯粹检验 取样接种T.G小管及适宜于本菌生长的其他培养基斜面各2支，每支0.2ml，1支置37℃培养；1支置25℃培养，观察3～5日，应纯粹。

4.3.2 病毒原毒液和其它配苗组织乳剂、稳定剂及半成品的无菌检验 取样接种T.G小管及G.A斜面各2支，每支0.2m1，1支置37℃培养；1支置25℃培养，观察3～5日，应无菌生长。

4.3.3 灭活检验 细菌灭活后，用适于本菌生长的培养基2支，各接种0.2ml，置37℃培养5日，应无菌生长。病毒液灭活后和细菌毒素脱毒后接种对本毒敏感的细胞、禽胚或实验动物，应正常。

4.3.4 含甲醛、苯酚、汞类等防腐剂和抗生素的制品 用T.G培养基50ml，接种样品（冻干制品先做10倍稀释）1ml，置37℃培养，3日后自小瓶中吸取培养物。分别接种T.G小管和G.A斜面各2支，每支0.2m1，1支置37℃；1支置25℃，另取0.2ml，接种1支G.P小管置25℃，均培养5日，应无菌生长。

如制品允许含一定数量非病原菌，应进一步作杂菌计数和病原性鉴定。

4.3.5 细菌性活疫苗（冻干制品恢复原量）及不含防腐剂、抗生素的其它制品或稀释液，将样品直接接种T.G小管、 G.A斜面或适于本菌生长的其他培养基各2支，每支0.2m1， 1支置37℃；1支置25℃，另用1支G.P小管，接种0.2m1置25℃，均培养5日。细菌性活疫苗应纯粹，其他制品应无菌生长。

4.3.6 血液制品和混浊制品如不加防腐剂或抗生素，可直接用不加琼脂的T.G小管和G.A斜面，接种量、培养条件、时间和判定标准同4.3.5项。如加防腐剂或抗生素，检验方法和判定同3.4项。

4.3.7 如培养后混浊不易判定时，可移植l次，再判定。

4.3.8 每批抽检的样品必须全部无菌或纯粹生长。如发现个别瓶有杂菌或结果可疑时，可重检原瓶（如为安瓿或冻干制品，可重抽样品），如无菌或无杂菌生长，可作无菌或纯粹通过。如仍有杂菌，可抽取加倍数量的样品重检，个别瓶仍有杂菌，则作为污染杂菌处理。 5 安全措施

5.1 检验过程中注意防止对检验人员和环境的污染。 5.2 检验人员必须穿戴工作服和口罩。

5.3 滴撒在操作台、地面的异物要进行消毒处理。 5.4 检验完毕后开封的检品均要经过高压灭菌处理。 6 记录和计算

检品在接种相关培养基后，每天观察温箱内的培养情况并记录观察结

4.杂菌计数

1 技术依据及原理

某些疫（菌）苗允许有一定数量的非病原性杂菌，但这类制品如污染杂菌，必须作杂菌计数。 2 注意事项

2.1 为防止交叉污染，一个样品用一个吸管或一个注射器。 2.2 各类生物制品的检验操作应在无菌条件下进行。 2.3 检验过程要仔细、认真。

3 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器

36～38℃普通温箱，试管架，10ml、5ml、1ml吸管，记号笔，记录纸，显微镜。

3.2 培养基 （含4%血清及0.1%裂解血球全血）马丁琼脂或酪胨琼脂培养基（G.A）。 4 检验步骤

污染杂菌的制品至少重新抽检3瓶，分别进行杂菌计数。用普通肉汤或蛋白胨水50倍稀释，接种于含4%血清及0.1%裂解血球全血的马丁琼脂平板或酪胨琼脂（G.A）平板上，每个样品接种2付平板，放置36～38℃培养48小时，再放置室温24小时，然后分别计算杂菌菌落（CFU）。 5 安全措施

5.1 检验过程中注意防止对检验人员和环境的污染。 5.2 检验人员必须穿戴工作服和口罩。

5.3 滴撒在操作台、地面的异物要进行消毒处理。 5.4 检验完毕后开封的检品均要经过高压灭菌处理。 6 记录和计算

培养72小时后，分别计算每个平板的杂菌数，并把两付平板的杂菌数相加后求平均数，作为该瓶的杂菌数。如污染霉菌，亦作为杂菌计算。 7 结果判定

任何1瓶每克组织（或每头剂）的非病原菌数，不应超过所检产品的规定数量。

5.支原体检验

1 技术依据及原理

病毒性活疫苗不得含有支原体。 2 注意事项

2.1 在检测中必须遵守规定的程序，每次都必须设阳性和阴性对照。 2.2 对每批支原体检验用培养基进行质量检测，并作记录。 2.3 操作时禁止口吹吸管。

2.4 操作人员必须戴口罩、工作帽，穿工作服，禁止检验人员将头发留在帽外。 2.5 保持实验室的清洁卫生，严格遵守常规的消毒制度。 2.6 必须在无菌、无支原体污染的环境条件下操作。 3 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器

36～38℃普通温箱，36～38℃二氧化碳培养箱，显微镜，试管架，10ml、5ml、2ml、

1ml吸管，小试管和100ml培养瓶，记号笔，记录纸。 3.2 培养基

检测由禽胚组织或其细胞制成的活疫苗用改良Frey氏培养基。 检测其他种类的活疫苗用支原体培养基。 4 检验步骤 4.1 样品处理

每批制品取样3～5瓶，混合后备用。如为冻干制品，则加液体培养基复原成混悬液后混合。

4.2 接种与观察

液体培养基培养 取5ml疫苗混合物接种于盛20ml小瓶液体培养基中，再从小瓶中分别取0.2m1移植接种于2支小管液体培养基内，将小瓶与小管放36～38℃培养，每日观察培养物有无颜色变黄或变红。如在5日尚未见变化，再从小瓶中取0.2m1移植于另2支管液体培养基内，继续培养观察5日，如此重复3次。若仍无变化，在最后一次接种小管的培养物经14天观察后停止观察。在观察期内，如果发现小瓶或任何一支小管培养物颜色出现明显变化，pH值变化达±0.5时，应立即移植于小管液体培养基和固体培养基，观察在液体培养基中是否出现恒定的pH变化，及在固体上有无典型的“煎蛋”状支原体菌落。

琼脂固体平板培养 在每次液体培养物移植小管培养的同时，取培养物0.1～0.2m1接种琼脂平板2付，放在含5～10％二氧化碳的潮湿环境下36～38℃培养。此外，在液体培养基颜色出现变化，pH值变化达 ±0.5时，也同时接种琼脂平板2付。各琼脂平板每5～7天在低倍显微镜下观察检查有无支原体菌落出现，经14天观察，仍无菌落者停止观察。 4.3 每次移植培养阳性对照，在同条件下培养观察。禽类疫苗用滑液支原体作对照，非禽类疫苗用猪鼻支原体作对照。 5 安全措施

5.1 检验过程中注意防止对检验人员和环境的污染。检验完毕后开封的产品均要经过高压灭菌处理。

5.2 检验人员必须穿戴工作服和口罩。

5.3 滴撒在操作台、地面的异物和污染的工作服要进行消毒处理。 5.4 检验完毕，开封的检品均要经灭菌后再进行处理。 6 记录和计算

检品在接种相关培养基后，每天培养情况并记录观察结果。 7 结果判定

7.1 任何一次琼脂平板上出现支原体菌落，判疫苗或血清不合格。

7.2 阳性对照中至少有一个平板长菌落，而阴性对照中无菌落生长，则检验有效。 8 附录及附加说明

上述小瓶培养基是指100m小瓶中盛培养基20m1；小管培养基是指小试管(1.0X10cm)中盛入1.0ml培养基。小管与小瓶皆须用胶塞或螺旋塑料塞封口。

6.外源病毒检验

1 技术依据及原理

由于使用的生物活性原材料、生产过程等均可引起种毒、兽用病毒性活疫苗等污染外源病毒。因此用高效价单特异抗血清中和待检物中相应活性成分或经适当处理后，接种不同的培养基质，观察病变以检出污染的外源病毒。 2 注意事项

2.1 检验所用原材料应符合有关规定。 2.2 中和用抗血清应高效价、单特异性。 2.3 严格无菌操作，防止交叉污染。 3 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器及设备

孵化器，CO2 培养箱，普通冰箱，普通显微镜，荧光显微镜，水浴锅，照蛋箱。 3.2 试剂

特异抗血清 3.3 检验器具

小试管、试管架、注射器(1ml)，吸管(1ml，5ml，10ml)，记号笔 3.4 样品 每批样品3～5瓶 3.5 其它 检验用记录纸、笔等 4 检验步骤 4.1 样品处理

4.1.1 禽源细胞、种毒及其制品

种毒或活疫苗 除另有规定者外，液体样品取2～3瓶混合，冻干样品取2～3瓶加入稀释液溶解后混合，用相应单特异抗血清在25℃中和1小时以完全中和样品中的活性成分作为检品。

除另有规定者外，病毒中和剂量为10羽份。 4.1.2 非禽源细胞（或细胞系）、种毒及其制品

种毒或活疫苗 除另有规定者外，液体样品取2～3瓶混合，冻干样品取2～3瓶加入稀释液溶解后混合，用相应单特异抗血清在25℃中和1小时以完全中和样品中的活性成分作为检品，

除另有规定者外，病毒中和剂量为1羽份。 4.2 检验方法

4.2.1 禽源细胞、种毒及其制品用鸡胚接种检查法 4.2.1.1 尿囊腔内接种试验

4.2.1.1.1 试验法 选择发育良好的9～11日龄SPF鸡胚10枚，每枚尿囊腔内接种0.2ml检品(如为疫苗，至少含10个羽份)，在37℃培养7天，弃去在接种后24小时内死亡的鸡胚，但鸡胚至少成活8/10，试验方可成立。培养结束时打开鸡胚，观察鸡胚有无异常，取尿囊液做红胞凝集试验，室温静置15～30分钟，观察有无红细胞凝集。

4.2.1.1.2 判定 鸡胚发育正常，尿囊液红细胞凝集阴性，该批制品判合格。 4.2.1.2 绒毛尿囊膜(CAM)接种试验

4.2.1.2.1 试验法 选择发育良好的9～11日龄SPF鸡胚10枚，每枚CAM上接种0.2ml检品(如为疫苗，至少含10个羽份)，在37℃培养7天，弃去在接种后24小时内死亡的鸡胚，但鸡胚至少成活8/10，试验方可成立。培养结束时打开鸡胚，观察鸡胚及CAM有无异常，取尿囊液做红胞凝集试验，室温静置15～30分钟，观察有无红细胞凝集。

4.2.1.2.2 判定 鸡胚发育正常，CAM无异常，尿囊液红细胞凝集阴性，该批制品判合格。 5 安全措施

检验过程中注意防止人员和环境的污染，检验人员必须穿戴工作服和口罩，严格进行无菌操作并在相应安全等级（级别）的实验室内进行，以防散毒。检验结束后对操作台、地面进行彻底消毒，用过的吸管浸泡在消毒液中，检验完毕后废弃的产品均经高压灭菌处理。

7鉴别检验

1 技术依据及原理

将含有对病毒外壳或囊膜抗原的特异抗体的血清与相应疫苗病毒混合，可使两者结合（即中和），使病毒失去对其宿主的感染性。用上述中和物接种靶动物（方法1）、鸡胚（方法2）或细胞培养（方法3），观察其是否感染病毒，即可判断疫苗病毒与血清的特异性。

2 试验过程的注意事项

2.1 应严格无菌操作。除接种动物外，所有操作均应在生物安全试验室或超净工作台中进行。

2.2 试验前应知道疫苗病毒的含量或毒价，否则，须先行测定。

2.3 两“中和”物的量要准确，中和温度要恒定，中和期间要适当摇动，并有专人值守。 2.4 细胞瓶上要有标记，防止错将细胞面放反。

2.5 接种动物要尽量轻柔，保定要得当、确实，以保证检验人员的安全和接种部位及接种剂量的准确。

2.6 试验完毕要及时清理现场，做好消毒处理工作。 3 试验材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器及设备

超净工作台（双人、垂直），恒温水浴锅，计时钟，孵化器，照蛋箱，架盘天平，恒温培养箱或CO2培养箱，低温冰箱，普通冰箱，倒置显微镜。 3.2 试剂

特异性血清，疫苗稀释液（生理盐水、细胞培养液或适于病毒和宿主动物的其他稀释液），无机盐类，细胞培养液（MEM、199、乳汉液、乳欧液），健康牛血清，抗生素（青、链霉素）， 0.25％胰酶，细胞分散液EDTA，酚红（1％），消毒剂（酒精、碘酊及脱脂棉球等）。 3.3 试验器具

试管及试管架若干，吸管（1ml、5ml、10ml），注射器（1ml，5ml，10ml）及针头（4＃～6＃），蛋盘，打孔器，石腊，细胞瓶及瓶塞 3.4 试验动物

家兔（1.5～2.0kg，用于猪瘟疫苗），鸡胚（SPF胚，9～11日龄，用于鸡新城疫、支气管炎疫苗）

3.5 细胞（根据待检疫苗质量标准选用适宜细胞，按常规方法制备成良好单层） 3.6 样品 每批疫苗任取1～3瓶。 3.7 其他 检验记录纸、笔等 3 检验步骤

4.1 逐瓶核对疫苗及其特异性血清瓶签，分别排放于操作台上。

4.2 稀释疫苗 每批疫苗任取样1瓶（另有规定除外），用该产品质量标准规定的稀释液，按其含量作10倍系列稀释至质量标准规定的稀释剂量。

4.3 稀释血清 对产品质量标准规定需要稀释的特异性血清（马立克氏病特异性血清和传染性法氏囊病特异性血清），用灭菌生理盐水作倍比稀释至该产品质量标准规定的稀释度。 4.4 中和

4.4.1 打开水浴锅电源，设置温度，调整好水温。

4.4.2 按其产品质量标准规定的接种量，分别计算疫苗及其特异性血清的中和用量。 4.4.3 根据每批疫苗与血清的中和用量，取适宜灭菌试管1～3支，分别用记号笔标明“中和”、“阴性对照”、“阳性对照”等字样，顺序排放于试管架上（产品质量标准中不设“对照”的除外）。

4.4.4 取适宜吸管，定量吸取疫苗稀释液，分别加入到“中和”及“阳性对照”管中。 4.4.5 取适宜吸管，吸取与疫苗稀释液等量的特异性血清，分别加入到“中和”及“阴性对照”管中。

4.4.6 取适宜吸管，吸取与“疫苗”、“血清”等量的适当稀释液，分别加入到“阳性对照”和“ 阴性对照”管中。

4.4.7 按其产品质量标准规定的中和温度及中和时间，核对水浴锅温度无误后，将上述试管轻轻振摇、混匀后置水浴中和，上好定时钟，由专人值守。 4.4.8 中和时间到，关闭水浴锅电源。取出试管，排放于试管架上。 4.5 接种 4.5.1 接种动物

取疫苗中和物及对照物，按其产品质量标准规定的动物品种、等级、数量、年龄、体重、接种途径、剂量，分别接种动物。 4.5.2 接种鸡胚

取疫苗中和物及对照物，按其产品质量标准规定的鸡胚日龄、数量、接种途径、剂量，分别接种鸡胚。 4.5.3 接种细胞

取疫苗中和物及对照物，按其产品质量标准规定的细胞种类、数量和接种量，分别接种细胞培养。

4.5.3.1 按常规方法制备细胞单层。

4.5.3.2 选择生长良好的细胞，逐一轻轻幌动细胞面数次后，用酒精棉球擦拭瓶口周围，再经过酒精灯火焰瞬时烧灼，倒去细胞生长液。

4.5.3.3 任取上述细胞1～2瓶，每瓶按原液量，用吸管换入新的细胞维持液。用记号笔标

记为“细胞对照”。

4.5.3.4 任取上述细胞3瓶，每瓶用吸管接种相当该细胞瓶生长液量20％的疫苗中和物，用记号笔标记为“中和后”。

4.5.3.5 任取上述细胞3瓶，每瓶用吸管接种相当该细胞瓶生长液量20％的阴性对照物，用记号笔标记为“-”。

4.5.3.6 任取上述细胞3瓶，每瓶用吸管接种相当该细胞瓶生长液量20％的阳性对照物，用记号笔标记为“+”。

4.5.3.7 将接种细胞瓶按不同方向轻轻幌动数次，使接种物能均匀散布于整个细胞面上，然后，置培养箱中吸附一定时间（一般为30～60分钟，期间可再幌动数次）。根据接种物的特性，也可不经吸附，直接补加细胞维持液；甚或可将接种物加入定量的细胞维持液中，混匀后直接接种细胞）。

4.5.3.8 吸附到时，取出细胞培养瓶，按接种顺序，逐瓶补足细胞维持液。

4.5.3.9 逐瓶检查瓶口是否塞紧，标记是否正确等。确认无误后，置培养箱至规定时间。 4.6 蚀斑技术（适用于鸡马立克氏病活疫苗） 4.6.1 按常规方法制备鸡胚成纤维细胞单层。

4.6.2 选择生长良好的细胞至少7瓶，分别倒去细胞生长液。

4.6.3 任取上述细胞3瓶，每瓶用吸管接种疫苗中和物0.2ml，用记号笔标记为“中和”。 4.6.4 任取上述细胞3瓶，每瓶用吸管接种阳性对照物，用记号笔标记为“阳性对照”。 4.6.5 将上述接种细胞瓶移至37℃～38℃培养箱中吸附1小时。

4.6.6 取出细胞瓶，每瓶用吸管补加含2％牛血清的199营养液至原液量。同时，取正常细胞1瓶，换以相同营养液。置37℃～38℃培养24小时。

4.6.7 制备营养琼脂（糖）。先取2％的琼脂煮沸溶化后，令其降温至46℃～47℃，再将含5％牛血清的199营养液，置水浴中加热至46℃～47℃，然后取两者等量混合即成。 4.6.8 取出上述细胞瓶，倒去营养液。然后，用吸管吸取相当细胞瓶容量1/10的营养琼脂（糖），小心复盖在细胞层上，以不产生气泡为宜，立即平放令其凝固。

4.6.9 待琼脂（糖）层凝固后，将细胞瓶倒置于37℃～38℃培养箱中，培养5～7天。 4 安全措施

5.1 检验人员必须穿戴工作服、鞋、帽和口罩。必要时，还应戴上手套。 5.2 滴撒在操作台、地面和试管外的检品材料，要及时擦拭消毒。

5.3 用过的吸管、注射器等器具和污染、废弃物要先行消毒处理，再行清洗或丢弃。

5 记录与计算

6.1 要严格按照各产品质量标准规定的观察内容和时限，仔细观察，详实记录。

特别是接种动物、鸡胚的临床反应，及组织、病理变化和接种细胞的病变程度或蚀斑数。 6.2 取出细胞瓶，用肉眼观察瓶底蚀斑。接种“疫苗中和物”和“阳性对照物”的细胞应有典型、清晰、形态不规则、边缘不整齐、直径在0.5～1.5mm的乳白色蚀斑（而正常细胞则无）。计数时，先用肉眼以蜡笔在瓶底点数，分别求出3瓶细胞的平均蚀斑数，再按下式计算蚀斑减少率。

阳性对照平均蚀斑数样品中和平均数

蚀斑减少率 ＝ × 100％

阳性对照平均蚀斑数

6 结果判定

按产品质量标准判定

7.1 疫苗与特异性血清中和后，接种动物或鸡胚无临床反应和组织病理变化；接种宿主细胞不产生病变（CPE）；且与“对照”（其产品质量标准规定需设的）差异明显，判该特异性血清中和试验结果阴性，即该疫苗特异。

7.2 蚀斑减少率95％的鸡马立克氏疫苗判为特异。 7 附录及附加说明

8.1 如接种动物或鸡胚意外死亡，或接种细胞污染，按其产品质量标准无法判定的，应查明原因重检。

8.2 当疫苗与特异性血清中和后，接种动物、鸡胚或接种宿主细胞似有一定反应，怀疑此疫苗未被完全中和所致，可选用更高效价的特异性血清重检。

8灭活疫苗汞类防腐剂含量测定法

1 技术依据及原理

本测定法的原理是样品加硫酸和，加热进行有机破坏，使硫柳汞的无机汞离子，在一定条件下与双硫腙生成螯合物，双硫腙的颜色由墨绿色变成黄色，滴定直到双硫腙绿色不变，汞离子全部螯合为终点，根据样品和对照品的对照滴定可算出样品中的汞离子的量，即硫柳汞的量。 2 注意事项

2.1 二氯化汞称重至0.13g是困难的，可以取接近数值，近似0.13g。

2.2 1ml注射器标定 用1ml注射器吸取蒸馏水至刻度，然后注入具塞称量瓶中，精密取水至重量，同时测定水的温度，用以下公式计算

M1=M/D

M1为注射器的实际容量，M为称得水的重量，D为测定温度下水的密度g/ml。如：M=0.9975水温20℃时D=0.99718则注射器的实际容量 为1.0003ml。 2.3 油苗的消化是否彻底是试验关键，完全按照操作要求去做。 2.4 凯氏烧瓶和分液漏斗不宜用太大的，否则影响结果和终点观察。 2.5 注射器抽取样品后要直接注入凯氏烧瓶底部，不能碰到瓶颈。 3 材料 3.1 仪器及设备

精密天平，烤箱等。 3.2 试剂

二氯化汞（AR），盐酸羟胺（AR），硫酸（AR），（AR） ，双硫腙（AR），氯仿（AR），四氯化碳（AR） 3.3 试验器具

称量瓶、50ml量瓶、5ml、1ml移液管、25ml凯氏烧瓶、分液漏斗(125ml)、1ml注射器（附15mm针头） 4 检验步骤

4.1 对照品溶液的制备

精密称取硫酸干燥器中干燥至恒重的二氯化汞0.13g，置100 ml量瓶中，加0.5mol/l硫酸溶液使溶解到刻度，摇匀。精密量取5 ml，置100 ml量瓶中，用0.5mol/l硫酸溶液稀释至刻度，摇匀，即得。每1 ml溶液含有Hg50μg。 4.2 试液制备

(1)0.05%双硫腙溶液

取双硫腙50mg加氯仿100 ml溶解即得。棕色瓶中冷暗处保存。 (2)0.00125%双硫腙溶液

取0.05%双硫腙溶液2. 5ml 加四氯化碳稀释至100ml。 （3）20%盐酸羟胺溶液

取盐酸羟胺1g加水至5 ml 溶解，即得。 （4）0.5 mol/l硫酸溶液

取硫酸30ml，缓缓注入适量水中，冷却至室温，加水稀释至刻度，摇匀即得。 4.3 供试品的制备

油苗消化 用经标定的1ml注射器（附15 cm长针头）准确量取摇匀的供试品溶液1ml，置25ml凯氏烧瓶（瓶口附小漏斗）中，加硫酸3ml，加（1→2）0.5ml，小心加热，待爆沸停止后，稍冷，再加（1→2）0.5ml—1ml，再加热消化，如此反复加（1→2）0.5ml，直至白炽化加热15分钟后，溶液与上次加热的颜色无改变为止，放冷（溶液应无色），加水20ml，再放冷至室温。 4.4 供试品溶液滴定

将上述消化液移入125ml分液漏斗，用水多次洗涤凯氏烧瓶，使总体积为80ml，加20%盐酸羟胺溶液5ml，摇匀，用0.00125双硫腙溶液滴定，开始时每次滴加3ml左右，以后逐 渐减少，至每次0.5ml，最后可少至0.2ml，每次加入滴定液后，强烈振摇10秒钟，静置分层，弃去四氯化碳层，继续滴定，直至双硫腙的绿色不变，即为终点。 4.5 对照品溶液滴定

精密量取对照品溶液1ml（含汞50μg），置125 ml分液漏斗，加水80ml，20%盐酸羟胺溶液5ml，用0.00125双硫腙溶液滴定，操作同上。 1 2 供试品溶液滴定毫升数（V1） 对照品溶液滴定毫升数（V2） 4.6 记录与计算

汞类含量%（g/ml）= (V1÷V2)×(0.0101÷供试品毫升数) ÷0.6 4.7 结果判定

将检验结果与产品的质量标准进行对比，按照产品质量标准的规定进行判定。

附注：试液制备

1 0.05%双硫腙浓溶液 取双硫腙50mg，加氯仿100ml使溶解，即得。本品应置棕色瓶内，

再冷暗处保存。

2 0.00125%双硫腙滴定液 取0.05%双硫腙浓溶液2.5ml，用四氯化碳稀释至100ml，即得。

本液应临用新制。

3 20%盐酸羟胺试液 取盐酸羟胺1g，加水5ml使溶解，即得。

9.甲醛含量测定法

1 技术依据及原理

本方法与英国药典和欧洲药典的方法原理基本一致。采用甲醛与乙酰丙酮在一定PH条件下反应，生成物为黄色，利用分光光度法测定反应物在410nm波长处的吸收值，根据样品和对照品的吸收值算出甲醛的含量。 2 注意事项

本方法测定时如果由于产品中甲醛的含量过高，使吸收值过大时可减少取样量，或扩大供试品的稀释倍数。油苗供试品溶液静置分层时间可适当延长，以增强分层效果，如经过滤仍不能完全澄清，可继续试验，不影响结果。 3 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器及设备

紫外 — 可见分光光度计，精密天平和高温箱等。 3.2 试剂

盐酸（AR），甲基红—溴甲酚绿混合指示液，无水碳酸钠（基准），甲醛溶液（AR），吐温—80（AR），乙醇（AR），醋酸（AR），醋酸铵（AR），乙酰丙酮（AR），溴麝香草酚蓝指示液，氢氧化钠滴定液，过氧化氢试液。 3.3 试验器具

称量瓶；250ml 锥形瓶；50ml 量瓶；5ml移液管和5ml吸管；1ml、0.5ml移液管；10ml量筒；125ml分液漏斗；水浴锅等。 4 检验步骤

4.1 盐酸滴定液（1mol/l）的配制与标定 4.1.1 盐酸滴定液（1mol/l）的配制

取盐酸90ml，加水至1000ml，摇匀即得。 4.1.2 甲基红—溴甲酚绿乙醇混合指示液的配制

取0.1%甲基红乙醇溶液20ml，加0.2溴甲酚绿乙醇溶液30ml，摇匀即得。 4.1.3 盐酸滴定液（1mol/l）的标定

取270—300℃干燥至恒重的基准无水碳酸钠1.5g精密称定，加水50ml使溶解，加甲基红—溴甲酚绿混合指示液10滴，将待标定的盐酸滴定液滴入制备好的碳酸钠溶液中至溶液由绿色变成紫红色，煮沸2分钟，冷却至室温，继续滴定至溶液由绿色变为暗紫色。每

1ml的盐酸滴定液（1mol/l）相当于53.00mg的无水碳酸钠.根据盐酸滴定液的消耗量与无水碳酸钠的取用量，算出盐酸滴定液的浓度，用F值表示。记录如下： 基准物+称量瓶重第一次干燥后重（g） 基准物+称量瓶重第二次干燥后重（g） 倾出基准物后称量瓶重（g） 基准无水碳酸钠重（g） 盐酸滴定液初读数（ml） 盐酸滴定液终读数（ml） 盐酸滴定液消耗数（ml） F= W÷（V×T）

W=称取的基准无水碳酸钠的量（mg）；V=滴定时消耗的盐酸ml数。

T=盐酸滴定液（1mol/l）对基准无水碳酸钠的滴定度mg/ml，即53.00。标定一般要做3份，相对偏差不应超过0.1%。 4.2 氢氧化钠滴定液（1mol/l）的配制

取氢氧化钠106g，加水100ml，振摇使溶解成饱合溶液，冷却后，置聚乙烯塑料瓶中，静置数日，取澄清的氢氧化钠饱合溶液56ml，加新煮沸过的冷水使成1000ml，摇匀。 4.3 甲醛溶液的含量测定

取甲醛溶液（GR或AR）1.5ml，精密称定，置锥形瓶中，加水10ml，溴麝香草酚蓝指示液2滴，滴加氢氧化钠滴定液（1mol/l）至溶液呈蓝色，加过氧化氢试液25ml，再精密加入氢氧化钠滴定液（1mol/l）25ml，瓶口置一小漏斗，在水浴上加热5分钟，不时振摇，冷却，用水洗涤漏斗，加溴麝香草酚蓝指示液2滴，用盐酸滴定液（1mol/l）滴定至溶液显黄色，并将滴定结果用空白试验校正，即得。每1ml的氢氧化钠滴定液（1mol/l）相当于30.03mg的CH2O。

空白试验 取过氧化氢试液25ml和精密量取氢氧化钠滴定液（1mol/l）25ml，置锥形

1 2 3 瓶中，加水10ml与溴麝香草酚蓝指示液2滴，用盐酸滴定液(1mol/l)滴定至溶液显黄色。 供试品+滴瓶重（g） 滴出供试品后+滴瓶重（g） 称取供试品重（g） 盐酸滴定液初读数（ml） 盐酸滴定液终读数（ml） 盐酸滴定液消耗数（ml） 含量计算：

甲醛含量=T×F×（V空—V滴）÷W×100%

V空白=空白滴定消耗盐酸滴定液的ml数 V滴=滴定消耗盐酸滴定液的ml数 F=盐酸滴定液的浓度校正因素

T=每1ml氢氧化钠滴定液（1mol/l）相当于甲醛的mg数，即30.03 4.4 对照品溶液的配制

取上述已测定含量的甲醛溶液适量，精密称定，置100ml量瓶中，加水至刻度，摇匀，精密量取上述溶液5ml于50ml量瓶中，加20%吐温—80乙醇溶液10ml，再加水至刻度，摇匀即得每1ml含甲醛0.1mg的溶液。配制对照品溶液时所取已测定含量的甲醛溶液的量可用下公式计算： W=1.0mg÷P%×100

W=取已测定含量的甲醛溶液的量（mg） P%=测定的甲醛溶液的含量 4.5 试液制备

4.5.1 醋酸——醋酸铵缓冲液（PH6.25）

醋酸液 醋酸（AR）12.9ml加水至1000ml。

醋酸铵液 醋酸铵（AR）173.4g加水至1000ml溶解。 醋酸液40ml 与醋酸铵液1000ml混合，置冷暗处保存。 4.5.2 乙酰丙酮试液

乙酰丙酮（AR）7ml，加乙醇14ml混合，加水至1000ml。 4.6 供试品溶液的制备

用5ml刻度吸管量取本品5ml，置50ml量瓶中，用20吐温—80乙醇溶液10ml，分次

1 2 3 空白试验 / / / 洗涤吸管，洗液并入50ml量瓶中，摇匀，加水稀释至刻度，强烈振摇，静置分层，下层液如不澄清，过滤，弃去初滤液，取续滤液即得。 4.7 检验法

精密吸取对照品溶液和供试品溶液各0.5ml，分别加醋酸—醋酸铵缓冲液10ml，乙酰丙酮试液10ml，混匀，置60℃恒温水浴15分钟，冷水冷却5分钟，放置20分钟后，按分光光度法，在410nm 的波长处测定吸收值并记入下表。 4.8 记录与计算

甲醛（按40%计）含量%=(0.1÷0.4)×(A1÷A2)

A1 供试品溶液的吸收度 A2对照品溶液的吸收度 0.1 对照品溶液的浓度% 0.4甲醛溶液的含量(按40%计) 4.9 结果判定

将检验结果与产品的质量标准进行对比，按照产品质量标准的规定进行判定。 5 检验法

精密吸取对照品溶液和供试品溶液各0.5ml，分别加醋酸-醋酸铵缓冲液10.0ml，乙酰丙酮试液10.0ml，只60℃恒温水浴15分钟，冷水冷却5分钟，放置20分钟后，照《分光光度法》进行，在410nm的波长处测定吸光度，计算，即得。

甲醛溶液（40%）含量%(g/ml)=0.25×（供试品溶液的吸收度/对照品溶液的吸收度）%

附注：试液制备

1 醋酸 -醋酸铵缓冲液(pH6.25)

醋酸液 醋酸（AR）12.9ml加水至100ml。

醋酸铵液 醋酸铵（AR）173.4g加水至1000ml溶液。 醋酸液40ml与醋酸铵液1000ml混合，只冷暗处保存。

2 乙酰丙酮试液 乙酰丙酮(AR)7ml，加乙醇14ml混合，加水至1000ml。

甲醛溶液含量标定 取甲醛溶液约1.5ml，精密称定，置锥形瓶中，加水10ml，与溴麝香草酚兰指示液2滴，滴加氢氧化钠滴定液（1mol/L）至溶液呈蓝色，加过氧化氢试液25ml，瓶口置一玻璃小漏斗，在水浴上加热15分钟，不时振摇，冷却，用水洗涤漏斗，加溴麝香草酚兰指示液2滴，用盐酸滴定液（1mol/L)滴定至溶液显黄色，并将滴定结果用空白试验校正。每1ml的氢氧化钠滴定液（1mol/L）相当于30.03mg的CH2O

10. EID50测定法

1 技术依据及原理

病毒含量的高低直接反映了产品的质量，因此用鸡胚接种测定病毒含量可作为判定产品质量的依据。 2 注意事项

2.1 所用鸡胚必须为SPF或健康易感鸡胚 2.2 严格进行无菌操作。

3 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器及设备 温箱。

3.2 试剂 灭菌生理盐水，鸡红细胞悬液。

3.3 检验器具 试管，吸管(1ml，5ml，10ml)，注射器(1m1)，50孔板，记号笔。 3.4 实验动物 SPF鸡胚或健康易感鸡胚 3.5 样品 每批样品1瓶 3.6 其他 检验记录纸、笔 4 检验步骤

4.1 随机抽取检品1瓶，放置在操作台上。 4.2 准备好试管和吸管等试验器具。

4.3 取一定数量的试管依次排列到试管架上，分别标明0#、-1#、-2#等。 4.4 用吸管吸取4.5ml生理盐水分别定量加入到试管中。

4.5 将生理盐水加入到疫苗瓶中，按检品瓶签注明的羽份加入适量生理盐水，将疫苗稀释成0.1ml或0.2ml含10羽份，然后取0.5 ml加到0#试管中(1羽份／0.1ml或0.2m1)，以此为基础进行10倍系列稀释，根据检品的种类和质量标准确定合适的稀释滴度。

4.6 选取9～10日龄鸡胚，作好蛋壳表面消毒后，打眼。取后三个稀释度，经鸡胚尿囊腔途径接种，每个稀释度接种鸡胚5枚，每胚接种0.1ml或0.2ml，接种后用石蜡密封接种孔并置37ºC继续孵化。

4.7 每日照蛋两次，接种后24小时前（鸡新城疫低毒力活疫苗为接种后48h前）死亡鸡胚作为非特异死亡胚弃去不记，以后随时取出死亡鸡胚，放4～8ºC冷藏。

4.8 根据检品的种类和质量标准的要求确定鸡胚的观察时间，试验结束时，检查鸡胚病变，或吸取尿囊液作红细胞凝集试验以判定鸡胚是否感染。

5 安全措施

检验过程中注意防止对检验人员和环境的污染，检验人员必须穿戴工作服和口罩，滴洒在操作台、地面的产品要进行消毒处理，检验完毕后开封的产品、用过的器具、鸡胚和废弃液体要经过高压灭菌处理。 6 记录与计算

详细记录检验过程和结果，并根据鸡胚感染数按照以下公式(Karber氏法)计算检品的EID50。

LogEID50＝L－d（S－0.5）

L＝最高浓度接种组稀释度的对数 d＝相邻稀释度对数之差

S＝各稀释度(剂量组)鸡胚感染阳性胚比率之和 7 结果判定

将检验结果与产品的质量标准进行对比，按照产品质量标准的规定进行判定。

10.ELD50测定法

1 技术依据及原理

病毒含量的高低直接反映了产品的质量，因此用鸡胚接种测定病毒含量可作为判定产品质量的依据。 2 注意事项

2.1 所用鸡胚必须为SPF鸡胚或健康易感鸡胚。 2.2 严格进行无菌操作。

3 材料、仪器、试剂的准备及基本要求 3.1 仪器及设备 孵化器，微量震荡器 试剂 灭菌生理盐水，鸡红细胞悬液

3.2 检验器具 试管，吸管(1ml，5ml，10ml)，注射器(1ml)，50孔板，记号笔。 3.3 实验动物 SPF鸡胚或健康易感鸡胚。 3.4 样品 每批样品1瓶 3.5 其他 检验记录纸、笔 4 检验步骤

4.1 随机抽取检品1瓶，放在操作台上。 4.2 准备好试管和吸管等试验器具。

4.3 取一定数量的试管依次排列到试管架上，分别标明0#、-1#、-2#等。 4.4 用吸管吸取4.5ml生理盐水分别定量加入到试管中。

4.5 将生理盐水加入到疫苗瓶中，按检品瓶签注明的羽份加入适量生理盐水，将疫苗稀释成0.1ml或0.2ml含10羽份，然后取0.5 ml加到0#试管中(1羽份／0.1ml或0.2m1)，以此为基础进行10倍系列稀释，根据检品的种类和质量标准确定合适的稀释滴度。

4.6 尿囊腔途径接种时选取9～10日龄鸡胚，绒毛尿囊膜途径接种时选取10～11日龄鸡胚，作好蛋壳表面消毒后，打眼或做人工气室。取后三个稀释度，经鸡胚尿囊腔或绒毛尿囊膜途径接种，每个稀释度接种鸡胚5枚，每胚接种0.1ml或0.2ml，接种后石蜡密封接种孔并置37℃继续孵化。

4.7 每日照蛋，24小时前死亡鸡胚视为非特异死亡弃去不记，以后随时取出死亡鸡胚放2～8C冷藏。

4.8 根据检品的质量标准确定鸡胚的观察时间，试验结束时检查鸡胚是否因接种物引起的特异性死亡，检验鸡新城疫中等毒力活疫苗时可吸取尿囊液做红细胞凝集试验。 5 安全措施

检验过程中注意防止对检验人员和环境的污染，检验人员必须穿戴工作服和口罩，滴洒在操作台、地面的产品要进行消毒处理，检验完毕后开封的产品、器具和废弃液体要经过高压灭菌处理。 6 记录与计算

详细记录检验过程，并根据鸡胚特异死亡数按照以下公式(Karber 氏法)计算检品的ELD50。

LogELD50＝L－d（S－0.5）

L＝最高浓度接种组稀释度的对数 d＝相邻稀释度对数之差

S＝各稀释度(剂量组)感染死亡鸡胚比率之和 7 结果判定

将检验结果与产品的质量标准进行对比，按照产品质量标准的规定进行判定。